Evoluce bakteriálních genomů Charakteristické rysy: Rychlé a rozsáhlé změny ve struktuře a informačním obsahu genomu (plasticita, dynamické změny) - Vnitřní přestavby - Získávání a ztráty genů a genetických elementů Vývoj kmenů v rámci druhu Adaptace na nové podmínky Mechanismy evoluce bakteriálních genomů transformace získávání genů HGT bakteriální genom Udržování genů poskytujících selekční výhody plazmid fágy Aditivní evoluce Reduktivní evoluce Fágy, plazmidy, IS, Tn, PAI genové duplikace, přestavby inaktivace genů, psedogeny ztráta genů Procesyzískávánía pozměňování genovýchfunkcí Ztrátygenových funkcívnitřními mechanismy rekombinace, delece Struktura genomu odráží životní styl bakterie Příčiny změn ve velikosti a obsahu genomu Mechanismy odpovědné za plasticitu genomu Změny genové exprese, ztráta funkce genůTranspozice Přeskupení DNA, delece DNA, integrace genů získaných HGT Homologií rekombinace Změny v genové expresi, ztráta funkce genůBodové mutace B. Ztráta vlastností HGT, integrace a delece velkých úseků DNAGenomové ostrovy a ostrůvky HGTGTA, VTA HGT, transdukce, fágová konverzeBakteriofágy Konjugace, HGT, mobilizace jiných elementů (plazmidů, chromozomu) Konjugativní transpozony, plazmidy Přenos genů, přeskupení DNAIntegrony Inzerce, delece, inverze DNA, změny genové expreseIS elementy, transpozony Získání přídatné genetické informaceTransformace Přeskupení DNA, inverze, duplikace, dalece DNA Integrace DNA přenesené HGT Homologií rekombinace Změna genové expreseBodové mutace A. Zisk vlastností DůsledkyGenetický element nebo mechanismus Spektrum faktorů podílejících se na změnách genomů Frekvence změn Vnitřní přestavby replikonů navozené přítomností repeticí •Duplikace (amplifikace) •Delece •Inverze Typ přestavbyTypy repeticí • geny rRNA a tRNA • Inzerční sekvence • transpozony • krátké repetice • rhs a Chi-sekvence Homologní rekombinace Transpozice Místně-specifická rekombinace Nerovnoměrný crossing-over Mechanismus Přestavby navozené interakcí repetic (homologní rekombinace) 150-1000 bp Fylogenetický strom sestrojený z RFLP podmíněných přesuny IS1, IS2, IS3, IS4, IS30, IS150, IS186 Změny v genomu po dlouhodobém uchovávání kultur E. coli a S. typhimurium změny lokalizace IS změny velikosti genomu změny fenotypu Evoluční historie chromozomu E. coli (srovnání E. coli K12-MG1655 a kmenů se známou genealogií) 67 událostí: 37 inzercí a 30 delecí 90% ORF je pro všechny geny společné kb až Mb jedinečné DNA: * geny přenesené horizontálně plazmidy bakteriofágy transpozony genové kazety Rozdíly v genomech E. coli a S. typhimurium (divergence obou druhů před 120-150 milony let) - rozdíly způsobené rozsáhlými genomovými přestavbami: velké inverze zahrnující až 10% genomu četné oblasti jedinečné každému druhu tzv. „smyčky“ –inzerce nebo delece až 15% délky chromozomu s náhodnou distribucí - druhově-specifické geny získané horizontálním přenosem • geny lac u E. coli, geny pro invazivitu u S. typhimurium Závěry z analýz přestaveb genomu E. coli a S. typhimurium (u neselektovaných kultur) • Průměrný lokus je duplikován v každé z 1000 buněk • 10% buněk v kultuře nese duplikaci některé oblasti chromozomu • Velikost duplikací: 140 kb – 2100 kb Distribuce duplikací není náhodná Duplikace jsou ohraničeny dlouhými přímými repeticemi různého typu Duplikace funkcí adaptace na změny prostředí • zvýšení dávky genů • vytvoření redundantní DNA pro následnou genetickou divergenci paralogní geny – adaptace na nová prostředí Vytváření paralogních genů duplikací a divergencí Evoluční vztahy mezi ortologními a paralogními geny Jako homologní jsou označovány geny odvozené z jednoho společného (ancestrálního) genu. Již v roce 1970 bylo navrženo dělení homologiích genů na dva typy: geny paralogní a geny ortologní. Paralogní geny jsou výsledkem duplikace ancestrálního genu, zatímco ortologní geny jsou výsledkem speciace. zvýšený adaptivní potenciál Vznik plazmidů během evoluce bakteriálních replikonů Původní genom tvořený několika menšími replikony Vytváření hybridů těchto replikonů vzájemnou integrací Rozklad hybridů za vzniku větších nízkokopiových stabilních replikonů (chromozomů) nesoucích většinu genů, a malých vysokokopiových replikonů (plazmidů) Opakování procesu integrace a rozkladu, optimalizace informačního obsahu replikonů Výhoda vyššího počtu kopií: 1. vyšší dávka genů, 2. vyšší šance mutací 3. přenos mezi buňkami chromozom Plazmid (vícekopiový) F x F´ Horizontální přenos genů Často přenášené: operační geny (metabolismus a regulace, buněčná struktura) Zřídka přenášené: informační geny (transkripce, translace) Horizontální přenos genů je spjat s variabilními genetickými elementy profágy, plazmidy, IS-elementy, transpozony, integrony Počet horizontálně přenesených genů u vybraných druhů bakterií a archeií Druh Velikost genomu (Mbp) Počet ORF Horizontálně přenesené ORF Proteobacteria počet % Escherichia coli 4,64 4289 381 9,6 Haemophilus influenzae 1,83 96 96 6,2 Helicobacter pylori 1,67 1553 89 6,4 Rickettsia prowazekii 1,11 834 28 3,6 Gram-pozitivní bakterie Bacillus subtilis 4,21 4100 537 14,5 M ycoplasma genitalium 0,58 480 67 14,5 M ycoplasma pneumoniae 0,82 677 39 5,9 M ycobacterium tuberculosis 4,41 3918 187 5,0 Spirochaete Borrelia burgdorferi 0,91 850 12 1,56 Treponema pallidum 1,14 1031 77 8,3 Chlamydiae Chlamydia trachomatis 1,04 894 36 4,3 Deinococcus radiodurans 2,65 2580 95 3,92 Synechocystis sp. 3,57 3169 219 7,5 Thermotoga maritima 1,86 1846 198 11,63 Archaea Aeropyrium pernix 1,67 2694 370 14,0 M ethanobacterium therm. 1,75 1869 179 10,3 M ethanococcus jannaschii 1,66 1715 77 5,0 Pyrococcus abyssi 1,76 1765 124 7,35 1% bakteriálních genů bylo získáno HGT z eukaryot Horizontálně přenesené geny (HGT) u E. coli K12 MG1655 (po divergenci E. coli a S. typhimurium) Genom E. coli obsahuje relikty 755 HGT (18% genomu = 548 kb, 234 přenosových událostí) Vyšší proporce HTG v oblasti terminátoru replikace Lokalizace HTG poblíž genů pro tRNA (přenos pomocí fágů) V blízkosti HGT se nachází 68% všech inzerčních sekvencí - IS jsou přenášeny spolu HTG - IS navozují integraci přenášené DNA Cholerový toxin A, BCTXφV. cholerae Enterotoxin A, Bφ42S. aureus Shiga toxin A, BH19, 933E. coli (enterohemorhagické) Difterický toxin A, BβCorynebacterium diphtheriae Botulotoxin A, BcIClostridium botulinum Bakteriofágy Tetanový toxinpCL1Clostridium tetani Invasiny, enterotoxinpWR100, pWR501Shigella flexneri Adheziny, enterotoxiny, kataláza, hemolyzinpO157,Vir plazmidyintestinální E. coli Hemolyzin, cytotoxický nektrotizující faktorpHly, Vir plazmidyE. coli (mimo střevo) Plazmidy proteázyOblast virStreptococcus pyogenes Protein vnější membrány, přežívání v makrofágáchLokus msgA/pagCSalmonella enterica sv. Typhimurium Příjem hemuLokus chuA a shuAE. coli, Shigella dysenteriae Ostrůvky patogenity Toxin toxického šoku Exotoxin Enterotoxin TSST-1-PAI (SaPI1 aj) Exotoxinový PAI Enterotoxinový PAI Staphylococcus aureus Pilusy, regulaceVPI (vibrio path. island)Vibrio cholera O1, 0139 Adhesiny, enterotoxinyLEE (esp-LEE)Enterohemorhagické E. coli Adhesiny, hemolyziny, cytotoxinyPAIEnteropatogenní E. coli Ostrovy patogenity Faktory virulence nebo jiné funkceOznačeníGenetický element Odhadované stáří genů horizontálně přenesených do chromozomu E. coli MG1655 a jejich lokalizace v genomu IS sekvence, profágy, Rhs Stáří genů KbzískanéDNA Genomické ostrovy („fitness“ ostrovy) části genomů se znaky mobilních genetických elementů s odlišným obsahem GC, ohraničené repeticemi a geny pro mobilitu ostrovy patogenity ekologické ostrovy saprofytické ostrovy symbiosové ostrovy Charakteristické pro jednotlivé kmeny v rámci druhu Obecné rysy genomických ostrovů (GEIs) Obecná struktura ostrovů patogenity Ostrov patogenity Geny pro virulenci Počet nukleotidů Inzerční sekvenceGen pro inzegrázu Přímá opakování Distribuce ostrovů patogenity u S. enteritica serovar Typhi Vznik genomických ostrovů u patogenních a environmentálních mikrobů Přenos fágem Integration, development and excision of GEIs. The schematic life-style of mobile GEI consists of the following steps: (1) acquisition by horizontal gene transfer; (2) integration into the host's chromosome by site-specific recombination; (3) development of the GEI by genetic rearrangements, gene loss (a) or gene acquisition (b); (4) excision from the chromosome; (5) transfer to another recipient Model vzniku ostrovů patogenity u patogenních E. coli Kmeny E. coli adaptované na různá prostředí Enterohemolytické k. Enteropatogenní k. Uropatogenní k. Fág (shiga toxin) plazmid plazmid Původní genom plazmidtRNA, att LEE (Locus of enterocyte effacement Escherichia coli secreted protein C Horizontálně získané virulenční faktory zodpovědné za patogenitu enterohemorhagického kmene E. coli O157:H7 LEE = locus for enterocyte effacement (uchycení na střevní sliznici a její léze) Plazmid O157 získaný patrně konjugací Sukcese genetických událostí vedoucích k virulenci druhů Shigella Kmeny Shigella jsou odvozeny z E. coli po získání virulenčního plazmidu a dvou chromozomových genů (SHI-1, SHI-2) a po ztrátě několika málo genů z genomu E. coli (lyzindekarboxyláza – inhibice toxinů) r. Shigella x Escherichia coli K-12 90% homologie DNA (!) Kolinearita genů Rekombinace po HGT LDC Vliv ztráty genů ztráty genů na patogenitu enterobakterí Genomové delece („černé díry“ ) zvyšující virulenci u Shigella spp. a u enteroinvazivních kmenů E. coli (EIEC) Výsledek hybridizace sond z 14 různých genů E. coli K12 z oblasti genomu 4254428-4406306 bp k genomové DNA reprezentativních kmenů Shigella a EIEC (+ = pozitivní hybridizace, - = negativní hybridizace) K12 Shigella spp., původce bacilární dysentérie, se liší od příbuzných komensálních kmenů Escherichia coli přítomností plazmidu, který kóduje virulenční funkce. Patogenní baktérie však vedle toho mohou postrádat vlastnosti, které jsou charakteristické pro nepatogenní druhy. Enzym lysindekarboxyláza (LDC) je přítomna u ≈90% kmenů E. coli strains, avšak vždy chybí u kmenů Shigella. Pokud je gen cadA kódující LDC zaveden do Shigella flexneri 2a, její virulence se sníží a je silně inhibována aktivita enterotoxinu. Inhibitorem enterotoxinu je kadaverin, což je produkt reakce katalyzované LCD. Srovnání genomů S. flexneri 2a a laboratorního kmene E. coli K-12 ukázalo, že v oblasti, kde se nachází cadA je u shigely rozsáhlá delece. Vybrané kmeny Shigella spp. a enteroinvazívních kmenů E. coli mají podobné delece genu cadA. Tyto výsledky naznačují, že patogenní kmeny Shigella spp. se vyvinuly z E. coli nejen po získání virulenčních genů nesenýcvh na plazmidu, ale současnou ztrátou genů v důsledku delece. Vytvoření těchto “černých děr” , tj. delece genů, které jsou škodlivé pro patogenní způsob života, představují evoluční proces, který umožňuje patogenu zvýšit jeho virulenci. To, že kadaverin snižuje aktivitu enterotoxinu, může představovat obecný návod a model pro “antitoxinovou terapii” – nový způsob léčby infekčních onemocnění. ZACHYTÁVÁNÍ GENŮ INTEGRONY Integron obsahuje: 1. att místo, umožňující opakové zachycení genů nebo genových kazet 2. Gen intl kódující integrázu, rozpoznávající různá 59 bp rekombinační místa 3. Promotor umožňující expresi vloženého genu Gen (nebo genová kazeta) Genová kazeta v CTn (případně v plazmidu) Integron obsahuje místně-specifický rekombinační schopný začleňovat a exprimovat geny přítomné ve strukturách nazávaných mobilní genové kazety. Integrony byly původně identifikovány na mobilních elementech patogenních bakterií jako hlavní rezervoáry genů antibiotikové rezistence. Patří mezi starobylé vzájemně fylogeneticky odlišné struktury, zjištěny u 10% sekvenovaných bakteriálních genomů. Diverzita kazet je extrémně vysoká – mají tedy významnou úlohu v adaptaci, nejen vzhledem k rezistenci k antibiotikům. Superintegron Vibrio cholerae Obsahuje více něž 100 kazet kódujících rezistenci k různým antibiotikům a další funkce konzervativní sekvence s vysokou homologií oblasti mezi kazetami odpovídající potenciálním attC místům Integrons are genetic structures capable of capturing and excising gene cassettes, which usually encode antimicrobial drug resistance determinants. Although integrons are not self-mobilizable, they are usually found in association with transposons and are often located on plasmids, facilitating their mobility. Integrons are thus ideally suited for the dissemination and recombination of antimicrobial drug–resistance genes. Integrons may usually be part of largest transposons, in turn often present on conjugative plasmid and integrative conjugative elements. That's the reason for being considered mobile genetic elements themselves. Typy stafylokokových chromozomových kazet (SCCmec) zodpovědných za rezistenci kmenů S. aureus k meticilinu Oportunní patogen schopný vyvolat onemocnění u vnímavých pacientů Primární patogen vyvolávající onemocnění jako součást svého životního stylu EVOLUČNÍ PROCES VYŽADUJÍCÍ ZÍSKÁNÍ VIRULENČNÍCH NEBO ZTRÁTU NEVIRULENČNÍCH ZNAKŮ Komensál nevyvolává buď žádné poškození nebo jen inaparentní onemocnění; může vyvolat imunitní odpověď EVOLUČNÍ PROCES VYŽADUJÍCÍ ZÍSKÁNÍ VIRULENČNÍCH NEBO ZTRÁTU NEVIRULENČNÍCH ZNAKŮ ADAPTIVNÍ PROCES VYVOLANÝ HOSTITELEM HOSTITEL ORGANISMUS, KTERÝ JE KOLONIZOVÁN NEBO INFIKOVÁN Interakce patogen-hostitel u bakteriálních infekčních onemocnění Minimální genom Definice: Základní sada esenciálních genů, kterou daný organismus potřebuje k udržení života. Představuje silně redukovanou sestavu genů jeho genomu, která se liší v závislosti na životním stylu a podmínkách prostředí (růstové požadavky, dostupné zdroje živin atp). Závisí na podmínkách experimentu, při nichž jsou esenciální geny určovány. Cíle studia minimálního genomu 1. Poznání životně nezbytných enzymových funkcí – pochopení prebiotické existence – předchůdců prvních bakterií 2. Pochopení vývoje bakteriálních druhů 3. Předpoklad pro přípravu bakterií s umělým genomem (Mycoplasma laboratorium) - produkce látek pro průmyslové využití (paliva, plasty, farmaka) Přístupy ke stanovení minimálního genomu A. Teoretické přístupy 1. Bioinformatický přístup – srovnání genomů různých organismů a vyhledání těch genů (genových funkcí), které jsou konzervovány u většiny druhů – tyto geny jsou esenciální, udržují se v podobných formách u všech 2. Modelování buněčných procesů, zejména metabolických drah. Vyhledání biochemických modulů a jeho konfrontace s genetickým základem. Přístupy ke stanovení minimálního genomu B. Experimentální přístupy – navození delece genů Gen, který je esenciální, 1. Využití sebevražedných plazmidů. Plazmid obsahuje sekvence homologní se sekvencemi ohraničující úsek genomu určený k deletování. Po začlenění plazmidu do genomu dojde k intramolekulární rekombinaci, která vede buď k odstranění plazmidu nebo žádaného úseku genomu (chromozomu). Lze využít též lineární DNA – princip je stejný jako u plazmidu). 2. Transpozonová mutageneze. Náhodné začlenění transpozonu vede k inzerční inaktivaci genů a ztrátě jejich funkcí 3. Antisense RNA. Inaktivace transkriptů strukturních genů. Navození delece úseku chromozomu pomocí plazmidu Srovnání informačního obsahu sekvencovaných genomů Počet informačních genů je v každém genomu zhruba stejný, i když se jejich velikosti značně liší. Počet genů ostatních funkčních kategorií je mnohem variabilnější a má tendenci se zvyšovat. Se zvětšováním velikosti genomu přibývá paralogních genů a zvětšuje se též biochemická komplexita organismu. Jedna čtvrtina ORF u každého druhu je jedinečná a nemá významnou sekvenční homologii k žádné dostupné proteinové sekvenci. Zhruba třetina (~100) esenciálních genů nemá žádnou ze známých funkci ZÁVĚRY VYVOZENÉ Z ANALÝZY MINIMÁLNÍCH GENOMŮ • Každý genom obsahuje dva typy genů – Esenciální geny zajišťující základní biologické procesy – Geny pro dosažení selektivní výhody v daném prostředí (metabolismus – nové substráty, nové faktory virulence) • Minimální sada genů je společná pro všechny druhy (současný odhad ~ 206 kódujících genů) • Prostředí určuje, který gen je pro daný druh esenciální a který je postradatelný The assembly of a synthetic M. mycoides genome in yeast. A synthetic M. mycoides genome was assembled from 1078 overlapping DNA cassettes in three steps. In the first step, 1080-bp cassettes (orange arrows), produced from overlapping synthetic oligonucleotides, were recombined in sets of 10 to produce 109 ~10-kb assemblies (blue arrows). These were then recombined in sets of 10 to produce 11 ~100-kb assemblies (green arrows). In the final stage of assembly, these 11 fragments were recombined into the complete genome (red circle). With the exception of two constructs that were enzymatically pieced together in vitro (white arrows), assemblies were carried out by in vivo homologous recombination in yeast. Major variations from the natural genome are shown as yellow circles. These include four watermarked regions (WM1 to WM4), a 4-kb region that was intentionally deleted (94D), and elements for growth in yeast and genome transplantation. In addition, there are 20 locations with nucleotide polymorphisms (asterisks). Coordinates of the genome are relative to the first nucleotide of the natural M. mycoides sequence. The designed sequence is 1,077,947 bp. The locations of the Asc I and BssH II restriction sites are shown. Cassettes 1 and 800-810 were unnecessary and removed from the assembly strategy. Cassette 2 overlaps cassette 1104, and cassette 799 overlaps cassette 811. Science 2 July 2010: vol. 329 no. 5987 pp. 52-56 Creation of a Bacterial Cell Controlled by a Chemically Synthesized Genome Mycoplasma mycoides Mycoplasma capricolum Science 2 July 2010: vol. 329 no. 5987 pp. 52-56 Creation of a Bacterial Cell Controlled by a Chemically Synthesized Genome