Speciální hematologická vyšetření Bourková L., OKH FN Brno Vyšetřování anémií Sledování vyšetření Hodnotit:  hloubku anémie v KO  změny v hodnotách měřených i počítaných parametrů RBC  početní změny WBC i PLT  morfologické změny erytrocytů v periferní krvi (barevné, tvarové, inkluze)  morfologické změny WBC i PLT v celém nátěru  morfologické a množstevní změny erytrocytární populace v KD  morfologické změny i leukocytární populace a MGK  komplexně výsledek celého KO a nález v KD: může se jednat o první příznaky nádorového onemocnění  souvislost se speciálními vyšetřeními Vyšetření retikulocytů  retikulocyty  přítomné RNA → schopnost tvorby HGB (analýza HGB v Retic)  odráží schopnost KD produkovat RBC  během 1 – 2 dnů dospívá Retic ve zralý erytrocyt  ↑ počet Retic → aktivace KD (zvyšování IRF)  ↓ počet Retic → útlum KD (snižování IRF)  mikroskopicky  supravitální barvení RNA v buněčných organelách (ribozomy, endoplazmatické retikulum)  analyzátorem  analýza prošlého a odraženého světla: probíhá na precipitovaných síťových strukturách RNA  analýza fluorescence: vlákna RNA jsou obarvena fluorescenčními barvami RBC Retic Cytochemické vyšetření zásobního železa  Zásobní železo Fe3+: ferritin, hemosiderin (agregované molekuly feritinu)  Princip vyšetření: (Fe3+) + ferrokyanid draselným - K4[Fe(CN)6] + HCl → barevný komplex = berlínská (pruská) modř - Fe4[Fe(CN)6]3  Hodnocení:  ve 100 NRBC  zelenomodrá granula v: o erytrocytech (siderocyty), NRBC (sideroblasty), NRBC okolo 2/3 jádra (prstenčité sideroblasty), makrofázích (siderofágy), extracelulárně  Normální hodnoty: 20 – 60 % pozitivních NRBC 2-4 siderofágy ze 6 nalezených makrofágů  Klinický význam:  snížení hodnoty: o sideropenické anémie  zvýšené hodnoty: o sideroblastické (přítomné prstenčité sideroblasty) o hemolytické anémie, megaloblastové anémie o MDS, leukémie Základní vyšetření pro hemolytické anémie  Obecné testy:  volný hemoglobin v plazmě (základní metodika pro vyšetřování intravaskulární hemolýzy)  osmotická rezistence  test autohemolýzy  hemosiderin v moči  Heinzova tělíska  Testy na průkaz abnormálních hemoglobinů  hemoglobin F  hemoglobin A2  elektroforéza hemoglobinu  Testy na průkaz nedostatku enzymů  glukózo-6-fosfátdehydrogenáza  pyruvátkináza  Heinzova tělíska Obecné testy  stanovení volného HGB v plazmě  Princip - spektrofotometricky: oxidace HGB (Fe2+) → methemoglobin (Fe3+) + KCN → barevný komplex - hemiglobinkyanid.  vyšetření osmotické rezistence  Princip - makroskopicky: stanovení odolnosti RBC v různě koncentrovaných hypotonických roztocích NaCl (fyziologického r.).  test autohemolýzy  Princip - spektrofotometricky: sledování hemolýzy RBC v prostředí: o fyziologického roztoku o fyziologického roztoku s glukózou o fyziologického roztoku s ATP.  vyšetření hemosiderinu v moči  Princip - mikrosopicky: Fe3+ v hemosiderinu + HCl + K4[Fe(CN)6] →krystalky - berlínská (pruská) modř - Fe4[Fe(CN)6]3 normál patologie Testy na průkaz abnormálních hemoglobinů  hemoglobin F  Princip - mikroskopicky: Inkubace nafixovaných preparátů v kyselém prostředí (pH 3,3). HGB A je z erytrocytů vyplaven. HGB F je vůči prostředí rezistentní, v erytrocytech zůstává.  Hodnocení – [%] : novorozenci (50-90%), věk<2 roky (0-4%), věk>2 roky (0-4%)  hemoglobin A2  Princip - chromatograficky: Na pozitivně nabité částice pryskyřice se se naváží negativně nabité části HGB, jednotlivé frakce HGB se vymývají pufrem, 1. frakce je s HGB A2, 2. frakce je s HGB S.  Hodnocení: Podíly jednotlivých frakcí HGB se stanovují spektrofotometricky.  elektroforéza hemoglobinu  Princip: V elektrickém poli a zásaditém prostředí se hemoglobiny pohybují různě rychle, na základě velikosti negativního náboje globinového řetězce, v závislosti na přítomných aminokyselinách. Negativně nabité molekuly HGB se pohybují k anodě (+). postupná eluce frakcí Testy na průkaz nedostatku enzymů  Heinzova tělíska  Princip - mikroskopicky: Heinzova tělíska znázorňují vysrážený degenerovaný hemoglobin v případě, že glykolytické enzymy erytrocytů nejsou schopny zabránit oxidaci hemoglobinové molekuly. Precipitáty se jeví jako oválná tělíska v erytrocytech. Objevují se těsně u buněčné membrány, ke které přiléhají, barví se supravitálně brillantcresylovou modří přímo nebo po inkubaci s acetylfenylhydrazinem.  glukózo-6-fosfát dehydrogenáza (G-6-PDH)  Princip - spektrofotometricky: Kinetické měření aktivity enzymu v UV oblasti. G-6PDH se podílí na redukci NADP+ na NADPH (nikotinamid adenin dinukleotid fosfát), nárust NADPH je přímo úměrná aktivitě G-6-PDH.  pyruvátkináza  Princip - spektrofotometricky: Kinetické měření aktivity enzymu v UV oblasti. V přítomnosti pyruvátkinázy dochází při katalytické reakci ke spotřebě NADPH, jejíž pokles je nepřímo úměrné aktivitě pyruvátkinázy. Retic Heinz. těl. v ery Bite cells Cytomorfologická vyšetření krevních buněk v souvislocti s onkologickou hematologií Sledování vyšetření Hodnotit:  celý krevní obraz  početní změny WBC, RBC, PLT, přístrojová hlášení  morfologické změny v periferní krvi  WBC spolu s diferenciálním rozpočtem, RBC, PLT  morfologické a množstevní změny v kostní dřeni  u leukocytární, erytrocytární a trombocytární populace, včetně MGK  referenční meze myelogramu dospělých: http://www.hematology.cz/doporuceni/laboratorni_sekce/files/referencni_m eze/Doporuceni_LS_CHS_CLS_JEP-Referencni_meze- myelogram_dospelych_v1.pdf  cytochemická vyšetření  počet blastů pro diagnostiku akutní leukémie:  dle WHO klasifikace > 20% Příklady morfologických abnormalit u akutních lymfoblastických leukémií Dělení dle FAB klasifikace (není součástí WHO klasifikace)  ALL – L1  morfologické nálezy: o menší blastické buňky o vysoký N/C (nukleo-cytoplazmatický) poměr o jemnější chromatin o nejasná jadérka  ALL – L2  morfologické nálezy: o větší, často polymorfní blastické buňky o bohatší cytoplazma o jasná jadérka  ALL – L3  morfologické nálezy: o velké buňky o bazofilní cytoplazma o vakuolizace (Burkittův lymfom) Příklady morfologických abnormalit u akutních myeloblastických leukémií Dělení dle FAB klasifikace  AML – M0  morfologické nálezy: o AML s minimálními znaky myeloidní diferenciace o agranulární blasty  AML – M1  morfologické nálezy: o AML bez vyzrávání o Auerovy tyče  AML – M2  morfologické nálezy: o AML s vyzráváním o podíl monoctárních buňěk <20% o Auerovy tyče Příklady morfologických abnormalit u akutních myeloblastických leukémií Dělení dle FAB klasifikace  AML – M3  morfologické nálezy: o AML - promyelocytární o do nádorové populace buněk zahrnovány blasty i abnormální promyelocyty  typ M3 – hypergranulární Auerovy tyče, snopce Auerových tyčí  typ M3 – variantní dvoulaločnatá, mnoholaločnatá jádra až agranulace cytoplazmy, oválné inkluze, Auerovy tyče  AML – M4  morfologické nálezy: o AML - myelomonoctární o podíl monoctárních buněk > 20% o v KO bývá monocytóza  AML – M5  morfologické nálezy: o AML - monocytární  typ M5A monoblasty, méně granulace, vakuolizace  typ M5B více promonocytů, monocytů > 80% M5A M5B Příklady morfologických abnormalit u akutních myeloblastických leukémií Dělení dle FAB klasifikace  AML – M6  morfologické nálezy: o erytroleukémie o erytroblasty (proerytroblasty + NRBC) > 50% ze všech jaderných buněk o myeloblasty > 20% (mohou být Auerovy tyče) o dysplázie v erytrocytární řadě (členitá jádra, karyorexe, vícejaderné NRBC, vakuolizace, megaloblasty  AML – M7  morfologické nálezy: o megakaryocytární leukémie o blasty většinou megakaryoblasty o dysplatické změny MGK Příklady morfologických abnormalit u lymfoproliferativních onemocnění  základní nálezy  změny v počtu WBC (snížení, normální počet, zvýšení – dle typu onemocněí až nad 100x109/l i přes 500x109/l)  lymfoctóza  reaktivní LY, atypické LY (atypie jádra a cytoplazmy), mladší lymfocyty, holá jádra (jaderné/Gumprechtovy stíny)  morfologické abnormality lymfocyt reaktivní LY CLL jaderné stíny PLL proly HCL splenický lymfom vilózní LY zářezy v jádře vysoký N/C poměr členitá jádra LGL lymfocyt myelom D - Příklady morfologických abnormalit u myeloproliferativních onemocnění  základní nálezy  zvýšený počet WBC ( často až 100x i více), zvýšený počet PLT (možný extrémní počet až k 1000x109/l)  možné morfologické nálezy v návaznosti na typ onemocnění: o neutrofilie a mladší vývojová stádia (myelocyty, metamyelocyty), bazofilie, může být eozinofilie, možná přítomnost různého podílu blastů, v KD hyperplazii granulocytárních řad o NRBC v periferní krvi, sledovat morfologické odchylky RBC (slzičkovité RBC) o patologická morfologie PLT, i gigantické PLT, v KD zmnožené dysplatické MGK, holá jádra MGK v periferii  morfologické abnormality ↑WBC BASO CEL holé jádro MGK ET ET MF PV CML Laboratorní nálezy u myelodysplastického syndromu  základní nálezy v periferní krvi * cytopenie  erytrocyty: anémie, ↑RDW, polychromázie, poikilocytóza, inkluze v RBC, dysplázie NRBC, ↓RETIC  leukocyty: obvykle ↓WBC, ↓NE, hypo/hyper(>5segmentů) - segmentace NE, pseudo-Pelgerova-Huëtova anomálie, hypo/hyper/nerovnoměrná-granulace NE, vakuolizace NE, evt. přetrvávající bazofílie cytoplazmy NE, abnormální mono/promonocyty  trombocyty: většinou ↓PLT, ↑PDW, makro PLT, hypogranulární PLT, fragmenty cytoplazmy MGK, mikro MGK, jádra MGK  základní nálezy v kostní dřeni  dyserytropoéza: podobné dysplatické změny jako v PK, dále: o jádro: mezijaderné můstky, karyorexe, vícejadernost, megaloidní rysy, zneokrouhlení jádra o cytoplazma: vakuolizace, nerovnoměrná barvitelnost  dysgranulopoéza: podobné dysplatické změny jako v PK, dále: o asynchronie vyzrávání jádra a cytoplazmy, Auerovy tyče, pseudo-Chediakova-Higashiho granula  dysmegakaryopoéza: o mikro/obrovské MGK, hypo/hyper - lobularizace MGK, vícejaderné MGK, vakuolozace, hypogranulace MGK  Sledovat:  charakter dysplazie pro rozlišení typu MDS  počet blastů v PK a KD  cytopenie v KO (bez dysplastických změn by neměla být návaznost na diagnostiku MDS) Příklady morfologických abnormalit u myelodysplastického syndromu heterozygot homozygothomozygot hyposegmentace hypogranulace dysplázie NRBC mitóza NRBC pseudo- Chediakova-Higashiho granula Auerovy. tyče makrofág dysplatický MGK dysplatický MGK dysplatický MGK hyposegmentace hypogranulace hyposegmentace hypogranulace blast hyposegmentace dysplázie NE interplazmatický můstek substrát ↓ inkubační roztok + enzym (glykogen, lipidy) ↓ buňka  obarvené precipitáty ↓ v místech přítomnosti enzymu (substance) v buňce Cytochemická vyšetření hodnocení -mikroskopicky: negativní (0) až počet (+) intenzita zbarvení je úměrná množství enzymu (glykogenu, lipidů) fixace nátěru Cytochemická barvení: o neutrofilní alkalická fosfatáza myeloeroxidáza PAS (Periodic Acid – Schiff) nespecifická esteráza (s blokádou fluoridem sodným) kyslá fosfatáza (s rezistencí na kyselinu L-vinnou) Cytochemická vyšetření o neutrifilní alkalická fosfatáza  hodnocení: v periferní krvi, neutrofilní tyče a segmenty  klinický význam: ↓ALP u chronické myeloidní leukémie, ↑ALP u chronické neutrofilní leukémie  myeloperoxidáza  hodnocení: v primární granulaci NE, EO, MO (množství enzymu se zvyšuje s vyzráváním buněk), lymfocyty jsou vždy negativní, sledování přítomnosti Auerových tyčí  klinický význam: rozlišení myeloblastické nebo monoblastické leukémie od lymfoblastické  PAS  hodnocení: typ pozitivity (difúzní, jemně nebo hrubě pozitivní granula) o fyziologická: myel.buňky (difúzní), monocytárníbuňky (jemná granula), lymfocyty (mohou být výraznější granula), NRBC (negativní) o patologická: LY u CLL (většinou výrazná granulární pozitivita), lymfoblasty u ALL (většinou pozitivní), NRBC hrubozrná pozitivita  klinický význam: leukémie, MDS, anémie 2+ 3+ Cytochemická vyšetření  nespecifická esteráza s blokádou fluoridem sodným  princip: enzym reaguje se substrátem nebo je reakce blokována NaF (současné barvení dvou nátěrů)  hodnocení: o po inkubaci bez blokády: myeloidní buňky a lymfocyty pozitivní (0/+), monocyty (+/+++) o po inkubaci s NaF: pozitivita u myeloidních buněk a lymfocytů stejná nebo jen lehce zeslabená, u monocytů zeslabení (0/+)  klinický význam: k průkazu AML M4 a AML M5  kyselá fosfatáza s rezistencí na kyselinu L-vinnou  princip: enzym reaguje se substrátem nebo je reakce blokována kyselinou L-vinnou, pokud je v buňce přítomen isoenzym -5, potom je reakce na kyselinu L-vinnou rezistentní (současné barvení dvou nátěrů)  hodnocení: o po inkubaci bez blokády: granulocyty, monocyty, lymfpcyty pozitivní na (0/+) o po inkubaci s kyselinou L-vinnou: pozitivita zůstává pouze v lymfocytech s izoenzymem-5  klinický význam: pozitivita v lymfocytech po inkubaci s kyselinou L-vinnou slouží k diagnostice klasické formy HCL HCL po blokádě NaF po blokádě k. L-vinnou před blokádou před blokádou Podpořeno MZ ČR – RVO (FNBr, 65269705)