Heterologní expresní systém v oocytech Xenopus Systém vhodný pro expresi genů z vyšších eukaryot ­ dochází k posttranslačním úpravám a transportu, včetně exkrece cDNA vakciniový vektor (T7-polymeráza + plazmid (P-T7) Proteiny lokalizované v membráně Strategie funkčního klonování v oocytech Xenopus Studium vývojových defektů pramenících z nadprodukce normálních nebo změněných produktů genů Extraction Affinity chromatography Microinjection Poly(A)+RNA Poly(A)+RNA Size fractionation Microinjection Synthesis In vitro transcription and capping Assay for functional expression Xenopus oocyte cDNA library Tissue Izolace klonu cDNA obsahujícího receptor pro tachykinin Substance K, neurokinin mRNA připravená z hovězího žaludku mRNA testování funkce Knihovna cDNA Paulmichl et al. 1992Cl- channel (Madin Darby canine kidney epithelial cell) Frech et al. 1989K+ channel (rat brain) Channels Tate et al. 1992Na+-independent neutral amino acid transporter (rat kidney) Hediger et al. 1987Na+/glucose co-transporter (rabbit intestine) Carriers Honda et al. 1991Platelet-activating factor receptor (guinea-pig lung) Hollmann et al. 1989Glutamate receptor (rat brain) Masu et al. 1987Substance K receptor (bovine stomach) Lubbert et al. 1987Serotonin 5-HTIC receptor (mouse choroid plexus) Straub et al. 1990Thyrotropin-releasing hormone receptor (mouse pituitary) Receptors ReferenceProtein Examples of cDNAs encoding plasma membrane proteins which have been cloned by functional expression in Xenopus oocytes Dysgeneze hybridů navozená transpozicí P-elementů Kmen P Kmen M Vysoká frekvence mutací, chromozomové aberace, neschopnost tvorby gamet P element 2,9 kb 31 bp Časná embryogeneze u drosofily, přenos P elementů do zárodků Vajíčko kmene M PD pBR322 Začlenění procesem transpozice, ne celý plazmid Přenos P-elementu do potomstva Linie obsahující P-element v různých genech Transpozice P-elementů, dysgeneze 9 synchronous nuclear divisions Selekční markery rosy+ adh ....etanol neoR ...G418 Vektory odvozené z P-elementů Více než 40 kb Structure of helper P-element: p 25.7 wings clipped Structure of P-element derivative: Carnegie rosy = xanthine dehydrogenase Přenos genů do drosofily zprostředkovaný P-elementy Tn+ 20-50% ry+ ry+ plasmid ry­ ry­ (M) ry­ ry­ (M)rosy­ eyes rosy+ eyes Some ry­ ry+ progeny Pomocný plazmid Embryo Needle 0.5 mm Adult ry+ in some germ line cells reportéry (lacZ, GFP), geny kódující toxiny mikrochirurgické ,,zákroky" ~ inzerční mutaganeze Změna fenotypu Využití P-elementů jako mutátorů křížení Potomstvo obsahující mutátor integrovaný v některém genu Segregace chromozomů, eliminace pomocného P-elementu Kmen obsahující mutátor (defektní P-element se selekčním markerem) Kmen s pomocným P-elementem a aktivní Tnázou (,,jumpstarter") Linie se stabilně integrovaným mutátorem Studium exprese genů v tkáních Vyhledávání zesilovačů Plasmid rescue Two hybrid system Příprava transgenních savců Možnosti přípravy geneticky modifikovaných myší Gamety ZygotaPrimordiální zárodečné buňky Transfekce Náhrada jader Transfekce Retrovirový přenosSomatické buňky ES buňky Přenos buněk Blastocysta (intracytoplasmic sperm injection) GFP Mikroinjekce DNA Životní cyklus myši; stadia během nichž lze vnášet geny Vytváření transgenních myší mikroinjekcí cizího genu do oplozeného vajíčka DNA SV40, tkHSV, lidský inzulin, -globin, interferon Důkaz transgenu, např. PCR, in situ hybridizací Úspěšnost uchycení 10-30% exprese umlčení Až 40% potomstva obsahuje transgen začleněný náhodně, obvykle tandemově ve více kopiích v jednom chromozomu Manipulace s embryonálními kmenovými buňkami Vnesení genů Transfekce, elektroporace, retrovirová infekce Terapeutické klonování, náhrada tkání a orgánů Vrstva ibroblastů, LIF Příprava ES buněk s geny knokautovanými homologní rekombinací AAMm Dárkyně ES buněk PNS vektor (m) AAMM Vytvoření myši nesoucí knokautovaný gen AAMm aaMM aaMM + AAMm Dárkyně ES buněk Dárkyně blastocyst A = aguti, a = black, M = standardní gen, m = mutantní alela Pokračování ­ vytvoření myši s knokautovaným genem Stanovení genotypu analýzou DNA Struktura rozpoznávací sekvence lox P fága P1 Podle orientace loxP sekvencí je úsek DNA mezi nimi místně specifickou rekombinací prostřednictvím Cre-rekombinázy buď deletován nebo invertován ::::::::::::::::::::::::::::: Využití Cre-loxP rekombinačního systému k selektivní inaktivaci genů Gen A je ohraničen sekvencemi loxP Ve vybraných buňkách nebo tkáních je gen A deletován Cre-rekombináza se tvoří specificky jen v buňkách určitých tkání Cre-rekombináza pod kontrolou Tet-sytému = indukovatelnost jiný vektor transientní exprese Inženýrství chromozomů s využitím rekombinačního systému Cre-LoxP translokace Delece (MIKRODELECE) Genová exprese regulovaná tetracyklinem Systém tet-off tTA = tetracycline transactivator ­ hybridní protein složený z tetracyklinového represoru (gen = červená) a transkripčního aktivátoru (gen = modrá) Dox = doxycyklin Buněčně-specifický promotor Násobné sekvence tetracyklinového operátoru + silný eukaryotický promotorSystém tet-on Navázání tTA na promotor je nezbytné pro aktivaci transkripce transgenu rtTA = reverse tetracycline-controlled transactivator systém ­ nukleotidová sekvence tetracyklinového represoru obsahuje mutaci zabraňující jeho vazbě na tetO; k vazbě dojde po interakci s Dox. Přidání Dox vypíná expresi transgenu Přidání Dox zapíná expresi transgenu Tetracyklinový systém regulace Obě transkripční jednotky (tTA/rtTA + transgen) mohou být umístěny na jeden vektor, což usnadňuje přípravu transgenních myší. Využití: * Sledování dopadu tvorby defektních proteinů * Dopad nadprodukce určitého normálního proteinu (simulace buněčně specifických poruch) * Testování exprese genů u chorob, ovlivňujících jen určitý buněčný typ * Tvorba cre-rekombinázy * Mutantní forma genu, jehož produkt vytváří spolu s produktem endogenu nefunkční dimer (inaktivní komplex, např. receptor) ** Intrabody: protilátka vytvářená uvnitř buňky z transgenu ­ inaktivuje produkt cílového genu Aptamer: DNA/RNA oligonukleotid vázající se na cílový protein a inhibující jeho aktivitu Intramer: totéž jako aptamer, ale exprimovaný uvnitř buňky siRNA (RNA interference) miRNA dsRNA (RNA interference) Sense RNA (cosuppression) Deoxyribozymes Aptamers, intramers **Ribozymes or maxizymes Antibodies, intrabodiesAntisense oligonucleotides Dominant negatives *Antisense RNA Interference at the protein levelInterference at the RNA level Summary of methods for interfering with endogenous gene expression without mutating the target gene Mutantní forma genu, jehož produkt vytváří spolu s produktem endogenu nefunkční dimer (inaktivní komplex, např. receptor) Intrabody: protilátka vytvářená uvnitř buňky z transgenu ­ inaktivuje produkt cílového genu Aptamer: DNA n. RNA oligonukleotid vázající se na cílový protein a inhibující jeho aktivitu Intramer: totéž jako aptamer, ale exprimovaný uvnitř buňky miRNA Použití ribozymu typu ,,hammerhead" ke štěpení mutantní mRNA Úseky ribozymu komplementární k sekvenci mRNA cílového genu Mutantní mRNA ribozym Využití transgenů k usmrcování specifických buněčných typů (mikrochirurgické zásahy) Gen kódující toxin (transgen) je začleněn za regulační oblast aktivní v určité tkáně ­ exprese transgenu je tak cílena do buněk této tkáně Toxiny: difterický toxin, T-antigen SV40, ricin (lektin) Problém: exprese genu pro toxin v okamžiku aktivace endogenu (např. v časné fázi vývoje) může být letální pro organismus Alternativa: použití genu TK z HSV, který je zapojen za specifickou E-P sekvenci. Buňky s tímto genem nejsou usmrceny, dokud nejsou do organismu injikovány syntetické toxické nukleotidy ­ ty nejsou toxické pro buňky, v nichž k expresi genu nedochází, protože v nich není aktivována specifická E-P sekvence. V buňkách, v nichž je E-P aktivní, dochází k expresi TK, která syntetické nukleotidy metabolizuje na produkty, které zabíjejí dělící se buňky exprimující daný gen. Cílená exprese genu ve specifické tkáni Detekce protilátkou Konstitutivní tvorba T-ag Řídí tkáňově specifickou expresi klonovaného genu do beta-buněk pankreatu Transgen se exprimuje jen v pankreatu, kde navozuje vznik nádorů. V ostatních tkáních se neexprimuje. Tkáňově specifická exprese transgenu Akceptorové místo sestřihu Začlenění reportérového genu do intronu genu X sestřiženo v ES Transgeny jako reportérové geny pro sledování exprese genů hostitele 1. Selekce ES buněk obsahujících vnesený konstrukt (G418), 2. Injekce ES buněk do blastocyst, 3. Identifikace buněk (tkání), kde dochází k expresi lacZ, 4. Vyhledání genu X, který řídí expresi lacZ -galaktozidáza Use electroporation to introduce construct into ES cells Add G418 to select neo-containing cells Colonies of surviving cells must contain neo gene Isolate colonies Make a replica and stain with X-gal Inactive lacZ Active lacZ Grow cell lines No activation Activation during development Inactivation during development Regulated expression Expression throughout embryo Examine embryos stained with X-gal Inject cells Clone gene containing integrated transgene Využití reportérových genů k vyhledání genů aktivních v určitých fázích vývoje lacZ je aktivní v závislosti na místě začlenění Sledování exprese genu během vývoje embrya Buněčná linie obsahující transgen (lacZ) začleněný v konkrétním místě (genu) Inzerční inaktivace genů vede k pozměněným fenotypům, izolace těchto genů Analogicky lze využít retrovirových vektorů s reportérovými geny ­ infekce tkání vyvíjejícího se organismu Příprava transgenních ptáků germinální disk Ozářené recipientní embryo (čerstvě nakladené vejce) Transgen se stal součástí zárodečných buněk Cíle transgenoze u drůbeže Odolnost proti virovým a bakteriálním chorobám, proti kokcidióze Nižší obsah tuku a cholesterolu ve vejcích, vyšší kvalita masa Příprava rekombinantních proteinů: monoklonální protilátky, růstový hormon, inzulin, HSA, interferon, lysozym Pluripotentní buňky (blastodermální a primordiální) pěstované in vitro ˇ Zvířata (myši, drůbež, hospodářská zvířata, ryby) obsahující gen pro růstový hormon ­ rychlejší růst, změna vlastností produktů * Přežvýkavci obsahující ve střevě GMO-mikroorganismy, které redukují toxicitu některých rostlin (rozšíření potenciálu krmiv) * Drůbež s pozměněnými trávicími schopnostmi (celulóza, lignin, tuky) * Drůbež se zvýšeným obsahem lysozymu ve vejcích (využití v průmyslu a farmakologii) * Ovce s vylepšenou srstí * Myši s pozměněnými nebo inaktivovanými geny * studium lidských genetických poruch: neurodegerativní, imunitní, hormonální choroby, * vliv faktorů na organismus (např. léků, mutagenů) * studium poruch paměti * Zvířata jako dárci orgánů pro transplantace (xenotransplantáty) ­ orgány s pozměněnými antigeními vlastnostmi vhodné pro člověka * Zvířata produkující cizorodé látky v mléce, moči, krvi nebo tkáních (animal farming: zvířata jako bioreaktory) Příklady transgenních živočichů Transgenní zvířata * Transgenní prasata * Prasata exprimující lidský hemoglobin ­ 15 % lidského hemoglobinu * Náhražka krve pro transfůze, uchovávání orgánů pro transplantace * Transgenní myši používané jako modely při studiu lidských chorob * Např.: myši se změnou barvy srsti, abnormality v ledvinách, kostech, s cukrovkou, osteopetrozou, změnou vývoje T-lymfocytů, změněnou aktivitou interferonu, uspořádání genů pro imunoglobuliny, osteoartritis, s receptory pro viry /HIV/ a řada jiných. * Modifikace trávicích enzymů savců * Příprava myší, které depolymerizují celulózu v tenkém střevě nepřežvykující savci schopni trávit celulózu. * Transgenní kmen myší, který roste bez stárnutí * Gen pochází z kapra a kóduje protein tithonin. * Perspektiva ­ zavedení genu do dobytka ­ příprava křehkého masa Ovce, myš ­ knokaut prionového genu Myši ­ knokaut genu pro myostatin (chybění myostatinu vede k růstu svalů) ­ belgický modrý skot, jiná hospodářská zvířata Transgenní zvířata * Transgenní živočichové hypersenzitivní k mutagenům nebo karcinogenům * testování toxicity látek vnějšího prostředí, farmak aj. * Transgenní prasata s genem pro somatotropin * stejná rychlost růstu, o 15 % účinnější konverze potravy * zvířata mají méně tuku a netrpí poruchami * Transgenní ovce exprimující gen kódující obalový protein visna viru * vlastní retrovirová vakcína /retrovirus způsobující pneumonie, proti nimž není možná vakcinace/. Zavedení cizího genu do ovcí vede k produkci protilátek proti proteinu a tím ochraně vůči infekci. * Transgenní ryby * rezistentní k prostředí (salinita, kyselé deště) * rezistentní vůči chorobám * zvýšení přírustku ryb zavedením genu pro chimerický všeobecný růstový hormon (losos ­ 13-ti násobné přírustky ve srovnání s netransgenními rybami) Přenos genů do ryb: do oplozeného vajíčka nebo do časného zárodku je mikroinjekcí do cytoplazmy přenesena DNA (účinnost 10-30%), pak křížení transgenních ryb ­ ustavení transgenních linií) - Růstový hormon (all-fish n. all- salmon) pod kontrolou ,,antifreeze proteinu" Zvířata jako živé továrny (,,animal farming") koza ­ protein pavoučího vlákna v mléce, atp. kráva ­ lysozym v mléce Příklady látek vytvářených v transgenních zvířatech Antikoagulans krveLidský protein Cprase Léčba cystické fibrózyRegulátor CFTRovce, myš Léčba nanismuLidský růstový hormonkoza Náhražka krve při transfúzihemoglobinprase Navození srážení krveFaktor pro srážení krve VIII, IXovce Rozpouštění krevních sraženin Tkáňový aktivátor plazminogenukoza Léčba rozedmy plicAlfa-1-antitrypsinovce VyužitíLátkaZvíře New genes introduced into farm animals to alter growth chatacteristics Structural geneRegulatory elementSpecies Polly Klonování savců Transgenní bakterie (Rhodococcus) produkující toxin (cekropin) usmrcující trypanozomy ve střevě ploštic Complementary DNA encoding cecropin A Plasmid vector Rhodococcus rhodinii Transformed R. rhodinii Transformed R. rhodinii in into hindgut od reduvii T. cruzi T. cruzi reduced or eliminated Hindgut od reduviid bug Rhodnius prolixus (reduviid bug) Insects colonized with transformed R. rhodnii Trypanosomes destroyed Cecropin A produced endogenous in hindgut Cekropiny ­ polypeptidy s antibakteriálním účinkem z hmyzu Různé osudy DNA viru leukémie po přenosu do myši závislost na čase a metodě přenosu 20-40 kopií v jednom chromozomu Tkáňově specifická exprese Virus působí jako infekční agens Mozaikovitost, 1 kopie integrovaná v různých místech Analýza sexuální determinace ­ funkce genu sry 1. Lokalizace genu Tdy (Sry) na chromozomu 2. 2. Klonování genů z oblasti Tdy 14 kb fragment nesoucí gen Sry (tj. jediná DNA z chromozomu Y, která je nyní ve vajíčku) samičí samčí DNA zodpovědná za aktivitu genu Sry (není na chromozomu Y) Gen Sry podmiňuje tvorbu samčích pohlavních orgánů Injekce analogů nukleosidů PGH = promotor genu pro GH PP = promotor genu pro prolaktin Zvířata s genem tk pod kontrolou PGH (1) PP (2) V buňkách, v nichž je P aktivní, dochází k expresi TK, která analogy nukleotidů metabolizuje na produkty, které zabíjejí dělící se buňky exprimující daný gen. Objasnění vývojových vztahů mezi buňkami hypofýzy Prekurzorová buňka Buňky syntetizující růstový hormon (GH) Buňky syntetizující prolaktin diferenciace GH GH tktk PGH PP Trpaslíci Normální růst Závěry: * Buňky syntetizující prolaktin se nedělí (nejsou usmrcovány) * Buňky syntetizující GH jsou prekurzory buněk syntetizujících prolaktin 1) 2) exprese exprese