Luminiscenční spektroskopie excitace1 k1 k4 k5 k4 k3 A ® A* ® A* ® A+ ® A+ ® A k2 k3 k4 A hn hn hn Luminiscenční spektroskopie excitace Luminiscenční spektroskopie Fluorescenční spektroskopie Fosforescenční spektroskopie Chemiluminiscenční spektroskopie Základní pojmy Excitace a emise emise Interakce s rozpouštědlem Singletový excitovaný stav Singletový základní stav Základní pojmy Stockesův posun – ztráty energie po dobu excitovaného stavu nm Dl F Absorpce Emise Základní pojmy 2 l3 l2 l1 Základní pojmy Excitovaný stav – střední doba života 10-7 – 10-9 s. O O Základní pojmy Kvantový výtěžek fluorescence F = počet kvant emitovaných/počet kvant absorbovaných F F = ke/(ke + S kk) ke = rychlost emise kk = rychlost konverzních procesů Intenzita fluorescence látky = f (e, F, N) Základní pojmy Doba života excitovaného stavu Doba potřebná k poklesu fluorescence na hodnotu 1/e Io Střední doba života t t= 1/ kf t If = I0 e – t/ t lifetime Přirozená doba života to Definovaná pro F = 1 ∞ t0 = 2,88.10-9.n2.nA2 . ∫ e(n)dn 0 n- refrakční index rozpouštědla e – molární abs. Koeficient n – vlnočet abs. maxima A n Základní pojmy Střední doba života fluorescence Fluorescein 4,6 ns Chininsulfát 15 – 40 ns NADH 0,5 ns F = t/t0 Biochemicky významné fluorofory fluorofory Instrumentace schémaflu Instrumentace mercury xenon lamp Zdroj: Xenonová lampa Rtuťová výbojka Laser Světelné diody - LED (430, 450, 505, 592, 612 and 637 nm) lasery_a_barviva Instrumentace bandpass Monochromátor - mřížka - filtry shorpass Instrumentace schemafluo Instrumentace Shimadzu RF-5301PC – spektrofluorimetr Shimadzu Instrumentace Měření střední doby života fluorescence mereni_lifetime Podmínky fluorescence Fenolftalein Fluorescein Podmínky fluorescence polarita1 Závislost na polaritě a viskozitě polarita Nitrobenzoxadiazol Pokles polarity 6 – 1. Podmínky fluorescence Závislost fluorescence na teplotě 20 40 °C F 80 40 Podmínky fluorescence Stabilita fluorescenčního signálu chininsulfátu 40 80 min F 80 40 Podmínky fluorescence 1 Rayleighův rozptyl (Tyndalův rozptyl) 2 Fluorescenční emise 3 Ramanův rozptyl 1 3 2 Excitace 450 nm Emisní spektrum 450 nm 600 nm 3 Kvantitativní fluorimetrie Závislost intenzity fluorescence na koncentraci látky F = f (I, e, c, F) F = Io F [1 – 10-ecd] jestliže c ® 0 F = Io F.2,3.ed.c F c Kvantitativní fluorimetrie aminy Stanovení koncentrace aminokyselin 390/464 nm 340/455 nm 450/550 nm Kvantitativní fluorimetrie CBCQA-protein Stanovení bílkovin CBCQA CBCQA Kvantitativní fluorimetrie Detekce bílkovin v gelu (barevně: Coomasie blue, stříbrné barvení) Fluorimetricky: SYPRO Orange (Molecular probes) – citlivost 1 – 2 ng Kvantitativní fluorimetrie ethidium Detekce nukleových kyselin Ethidium bromid detekceDNA rRNA 16 a 23s barvená SYBR Green II Molecular Probes Kvantitativní fluorimetrie SYBR green – asymetrické cyaninové Barvivo Interkaluje přednostně do ds DNA, méně ss DNA , nejménš RNA Absorbuje modré λmax = 497 nm emituje zelené λmax = 520 nm Fluorogenní substráty galaktosidasy galatosidasy1 Galaktosidasy 4-methylumbelliferyl-a-galaktosid Fluorescein-digalaktosid Fluorogenní substráty peroxidase resorufin Peroxidasy – amplex red, vznik resorufinu Fluorogenní substráty peptidasy1 Proteinasy, peptidasy 1)Fluorescenční konjugáty proteinů a peptidů 2) peptidasy Fluorogenní substráty PLA Fosfolipasa A Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí Přirozené fluorofory (Tyr, Try) – fluorescence závislá na polaritě prostředí obklopující fluorofor H2O H2O F nm Emisní spektrum Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí t (min) F310 substrát > Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí fluosceinspek fluopH Fluorescenční konjugáty Karboxyfluorescein – (494/520 nm) Absorpce/emise fluoresceinu při pH 9 CF OG CF-karboxyfluorescein OG oregon green oregongreen Oregon Green - (496/524 nm) karoxyfluo Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí tetrametrhod tetrametrhodspek kumarrin Fluorescenční konjugáty Teramethylrhodamin – 545/580 nm) kumarinspek Kumariny – 350/450 nm) Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí dansyl dansylspek benzoxadiazol Fluorescenční konjugáty bezoxadiazolspek Dansyl Benzoxadiazol –N-sukcinimid Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí konjugace Fluorescenční konjugáty konjug Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí Interakce makromolekul s ligandy polarita F koncentrace makromolekuly Ligand volný Ligand vázaný L + M « LM Kd = Lf.Mf/LM Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí F = Ff + Fb F = Cf .Ff + Cb. Fb F = (C-Cb) Ff + Cb. Fb F = CFf – CbFf + Cb. Fb F = Fo + Cb (Fb – Ff) Cb = (F – Fo)/ (Fb – Ff) Ff, Fb – fluorescence volné, vázané frakce Fb, Ff –kvant. Výtěžek fluorescence vázaného, volného ligandu Cb,Cf – koncentrace vázaného, volného Ligandu C – celková koncentrace ligandu F – celková fluorescence Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí parinar AOC16 Interakce makromolekul s ligandy Použití fluorescenčních analogů FluorescPL Kys. cis-parinarová Anthroyloxypalmitát Fluorescein-PE Použití fluorimetrie ke sledování struktury biopolymerů a interakcí Použití značené makromolekuly Fluorescence značené bílkoviny F Koncentrace ligandu Fluorescence a cytochemie Fluorescenční rezonanční transfer energie (Försterův přenos) transfer2 Nezářivý přenos energie z donoru na akceptor (1 – 10 nm) Fluorescenční rezonanční transfer energie schematrans F nm DONOR A F Fluorescenční rezonanční transfer energie schematrans F nm DONOR A F AKCEPTOR Fluorescenční rezonanční transfer energie schematrans F nm DONOR A F AKCEPTOR Fluorescenční rezonanční transfer energie F nm A Fo F Donor h = 1 – F/Fo Fluorescenční rezonanční transfer energie transfer1 h= Ro6/(Ro6 + R6) Ro6 = 1,66.10-33.t.J/n2no2 t – doba života exc. stavu J – překryvový integrál n – refraktivní index rozpuštědla n – vlnočet emise donoru 7 Fluorescenční rezonanční transfer energie Použití – změření vzdálenosti mezi dvěma molekulami v bílkovině Tryptofan (290/340) vs. NADH (340/450 nm) priklad_transfer Fluorescenční rezonanční transfer energie prikladtransfer2 Hybridizační sondy Hybridizační sondy Molekulové majáky Hybridizační sondy Dynamika membrán •Fluorescence recovery after photobleaching Dynamika membrán • • • • • • •FRAP –Rychlost – průběh obnovení –Výtěžek (recovery) Fluorescenční anizotropie polar_princip Fluorescenční anizotropie polarf Polarizační filtry Fluorescenční anizotropie polar2 Fluorescenční anizotropie polarizace Fluorescenční anizotropie Rotační relaxační čas Fluorescenční anizotropie r = Iv – Ih Iv + 2Ih ro/r = 1 + 3t/r t, střední doba života fluorescence r, rotační relaxační čas molekuly ro – anizotropie nepohyblivé molekuly r = Vh/RT V objem h viskozita ro/r = 1 + 3tRT/Vh ro = (3 cos2a -1)/5 a excitace Polarizace fluorescence p = Ih – Iv Ih + Iv Fluorescenční anizotropie Využití: Interakce makromolekuly s ligandem E – S (K, I), Ag – Ab, hormon - receptor F mg makromolekuly r polarizace Fluorescenční anizotropie Využití: Měření viskozity prostředí ro/r = 1 + 3tRT/Vh ro/r = 1 + K/h h = 2,4r/(0,362 – r) r 20 30 40 50 °C Fl. anizotropie DPHT Vázaného v liposomech DPPC Fosforescence excitace1 k1 k4 k5 k4 k3 A ® A* ® A* ® A+ ® A+ ® A k2 k3 k4 A hn hn hn singlet Multiplicita M = 2S + 1 Fosforescence fosfo1 Střední doba života t 10-4 – 100 s tryptofan Fosforescence Kvantový výtěžek fosforescence FP = k3/(k3 + k2 + k4) Ff = k2/(k3 + k2 + k4) Ff/ FP = k2/k3 k1 k4 k5 k4 k3 A ® A* ® A* ® A+ ® A+ ® A k2 k3 k4 A hn hn hn F 100 200 300 °K fluorescence fosforescence Fosforescence schémaflu Experimentální uspořádání Fosforescence N2 Vzorek Rozpouštědla rigidní skla bez krystalů (ethanol, metanol, voda:ethylenglykol., atd Fosforescence Aplikace fosforescence fosf_latky Fosforescence fosfatasa Fosforescence alkalické fosfatasy 3 Try, pouze Try 109 fosforeskuje 1 – nativní enzym 2 – enzym po odstranění Zn 1 2 Chemiluminiscence •Při reakci musí vznikat dostatek energie, aby došlo k excitaci elektronů. Proto musí být reakce exotermní a obvykle je to oxidace. •Energie se využije pro excitaci elektronů, uvolní-li se jako teplo chemiluminiscence se neobjevuje. •Excitovaný produkt musí být schopný ztrácet svoji energii buď ve formě fotonu, nebo ji převádět na fluoreskující sloučeniny. Přímá emise fotonu z excitovaného produktu obvykle poskytuje krátké záblesky světla, zatímco transfer energie na fluoreskující sloučeniny se většinou projevuje jako dlouhodobá (v minutách) světelná emise. • Chemiluminiscence •Přístrojové vybavení: •od jednoduchých luminometrů až po vysoce automatizované chemiluminiscenční analyzátory, ve kterých se provádí imunochemické reakce s chemiluminiscenční detekcí. •Standardní luminometry se do určité míry podobají fluorimetrům. Před měřicí kyvetou ovšem nemají žádný zdroj světla ani filtr. Uspořádání za kyvetou odpovídá fluorimetrům (filtr, fotonásobič). Téměř všechny luminometry mají také nastřikovací zařízení, protože u zábleskové chemiluminiscence je nutné provést měření ihned po nástřiku reagencií. Některé luminometry měří luminiscenci v mikrotitračních destičkách. Chemiluminiscence •Jednoduchý luminometr • Chemiluminiscence •Luminometr na destičky • Chemiluminiscence Chemiluminiscence luminol luminol1 Luminol luminol2 Chemiluminiscence Luciferin luciferin Chemiluminiscence Chemiluminiscence Aequorin – Aequoria victoria aequorea Chemiluminiscence celenter Aequorin – Aequoria victoria aequor_coeln Chemiluminiscence aeq_spek Aequorin – Aequoria victoria aequo_anim Průnik vápníku do mitochondrií Aktivuje oxidaci