Monoklonální protilátky Jak je připravit a používat B. Vojtěšek Masarykův onkologický ústav Brno Prof. D.P. Lane a prof. E.B. Lane Institute of Medical Biology in Singapore Nový gen Připravený protein Imunizace Fúze Skríning protilátek Charakterizace protilátek Vývoj protilátek/ Imunizace/ Strategie skríningu Nejlepší informace pro vývoj protilátek včetně výběru antigenů, imunizačních schémat, strategie skríningu a metod charakterizace jsou v laboratorním manuálu “ANTIBODIES” a v novějším vydání tohoto manuálu “Using Antibodies” od prof. Davida Lane a prof. Eda Harlow. “Monoclonal antibodies” od prof. P. Shepherd a prof. C. Dean. Protilátky • Variabilita: gen imunoglobulinu má celou řadu sestřihových variant a tím vznikají unikátní protilátky • Jsou produkovány B-lymfocyty Polyklonální versus monoklonální protilátky polyklonální monoklonální Monoklonální protilátky • Imortalizace individuálních B buněk • Selekce „single“ buněčných klonů • Namnožení ve formě buněčných kultur Georges Köhler & Cesar Milstein, 1975 • Sekrece monoklonálních protilátek je – Homogenní – Stabilní – Redukuje množství použitých zvířat – Nelimitovaný zdroj protilátek Práce na úrovni proteinu • Exprese proteinu • Purifikace proteinu • Imunizace • Produkce protilátek Aplikace • Imunohistochemie na archivním materiálu • imunocytochemie • ELISA • imunoprecipitace • Western bloting a další metody 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 1 2 3 4 5 6 7 8 9 Práce na úrovni DNA • Klonování genu • Výběr a příprava vhodného expresního systému Imunocytochemická a imunohistochemická charakterizace protilátek • Barvení pozitivních a negativních buněk • Barvení archivního tkáňového materiálu • Testování podmínek fixace tkání • “Oživení” antigenů Imunochemická charakterizace protilátek • Pomocí purifikovaných proteinů a lyzátů • Dot-blot, ELISA • 1D and 2D elektroforéza a Western bloting Příprava monoklonálních protilátek Myší myelomová buněčná linie (“B cell tumour”) Normální B buňky ze sleziny imunizované myši Příprava monoklonálních protilátek Myší myelomová buněčná linie (“B cell tumour”) Normální B buňky ze sleziny imunizované myši Příprava monoklonálních protilátek – “Immortal” growth properties of a myeloma cell – Immunoglobulin producing properties of a normal B cell Hybridní buňka Fúzování buněk z myší sleziny s myelomovými buňkami Druhá injekce Třetí injekce První injekce Další injekce IgM Multivalentní nízká afinita IgG Bivalentní Střední afinita IgG Bivalentní Střední až vysoká afinita IgG Bivalentní Vysoká afinita Primary and secondary immune response 0 10 20 30 60 70 80 90 serumantibody level mostly IgM mostly IgGs Pro každý imunizační pokus používáme 4 myši- 60-80 dnů staré Nejčastější dotazy vzhledem k imunizacím: věk myší a množství antigenu 60-80 dnů staré myši jsou připraveny odpovídat velmi dobře při imunizacích. Starší myši mohou být někdy použitelné pro imunizace, ale my je neradi používáme. !!!! ????Proteiny: 5-25µµµµg proteinu/myš/injekce (je-li protein < 40KDA) 15-40µµµµg proteinu/myš/injekce (je-li protein > 40KDA) Peptidy: 9-15mer peptidy jsou nejvhodnější pro imunizace; čistota peptidů musí být > 50%. 1-15µµµµg peptidu/myš/injekce [peptid vázaný na nosič KHL (celkem pro jednu injekci 15-40µµµµg peptide-KLH)] Nepředávkujte mě prosím!!!!!!!! Já osobně nikdy nepoužívám větší dávku antigenu jak 40µµµµg na injekci a myš Immunization protocol 1) First injection – day 1: intraperitoneal injection of 1 – 40µg of antigen (in complete Freund’s adjuvant). 1) Second injection – day 21: intraperitoneal injection of 1 – 40µg of purified protein or peptide coupled to KLH (in incomplete Freund’s adjuvant). 3) Third injection – day 42: intraperitoneal injection of 1 – 40µg of purified protein or peptide coupled to KLH (in incomplete Freund’s adjuvant). 4) Fourth injection – day 43: intraperitoneal injection of 10µg of purified protein or peptide coupled to KLH (in incomplete Freund’s adjuvant). 5) Fifth injection – day 45: intraperitoneal injection of 10µg of purified protein or peptide coupled to KLH (in PBS). 6) Fusion – day 47 (protocol for production of monoclonal antibodies). Antigen (GST-MDM-2) for immunization of 5 mice: Contact person: Borek Vojtesek (tel: , e-mail:) 4 tubes in total for 4 injections of antigen (1st injection plus 3 boosts) Each tube contain X-XXµµµµg/ml of antigen Each tube is for immunization of 5 mice (100µl per mouse) Immunization schedule: 14. 11. 2005: 1st Injection of antigen 05. 12. 2005: 1st Boost 09. 12. 2005 1st Bleed 26. 12. 2005 2nd Boost 02. 01. 2006 2nd Bleed More injection will be decided after testing animal response to antigen. Secondary injection Tertiary injection Primary injection Multiple injection IgM Multivalent Low affinity IgG Bivalent Medium affinity IgG Bivalent Medium to high affinity IgG Bivalent High affinity Vyjmout slezinu a uvolnit slezinné buňky (106 buněk) Spočítat zdravé myelomové buňky (107 buněk) Smíchat buňky a promýt Přidat PEG, 30-60%, 1-6 min. Stále protřepávat. Velmi jemně naředit fúzovanou směs buněk do 50 ml selekčního média. Vysadit buňky na misky. Selekce vhodných protilátek • Selekce protilátek, které potřebujete pro svoji práci Skrining s využitím technik, ke kterým chceme protilátky využívat. • Primární skríning – Musí to být rychle proveditelné metody. • Sekundární skríning – Mohou být složitější metody, více selektivní. Pracujeme s menším množstvím vzorků, ale s většími objemy. Skríningové metody: mikrotesty Skríningové metody: mikrotesty Screening strategy for antibodies developed against the GST- protein IgG level GST- MDM2 GST-MDMX HIS- MDM2 HIS-MDMX Results of screening of MDM-2 (Western Blot) 7G8 4C8 1D5 4B2/2A9 POSITIVE CONTROL Pre-sera 1st Bleed Mdm-2 His-Mdm2 Gst-Mdm2 GST-MdmX M30 peptide CGY-T7 tag peptide CGE-flag peptide M30 CGG CGY Results of screening of [LLEDGEDFNLGDALD [keratin 18 (M30)] M30 control Screening strategy for antibodies developed against the peptide IgG CGE-peptide M30-peptide CGY-peptide „Single cell“ klonování • Oddělit od sebe správně a nesprávně fúzované buňky • Výběr stabilních hybridomových linií Klonovací metody • Výsev přímo fúzovaných buněk do polotuhého agaru • Vyředěním pozitivních hybridomů – do agaru – do mikrodestiček • Separováním kolonií před skríningem • Výběr jednotlivých kolonií pod mikroskopem Hybridomy rostou velmi rychle, téměř jako neadherentní buňky Zrovna „vysazené“ buňky Dvou až třídenní kultivace Téměř „přerostlé“ buňky. Je nutné je vyředit. Charakterizace monoklonálních protilátek • Třída a podtřída imunoglobulinů (IgM; IgG1, IgG2a, IgG2b, etc) • Stabilita při skladování • Rozlišování antigenů: – Imunofluorescence (subcellulární lokalizace) – Imunohistochemie (tkáňová distribuce) – Imunoblotting (molekulová hmotnost) – Imunoprecipitace (interakce s cílovým antigenem) • mezidruhová “cross-reactivity“ Charakterizace monoklonálních protilátek Protilátky jsou tak dobré jak dobře jsou charakterizované!!!!! Využití monoklonálních protilátek • MAb jsou fantastickým nástrojem pro buněčnou a molekulární biologii – Imunofluorescenční nebo imunoperoxidázová mikroskopie pro detekci specifických proteinů v buňkách a tkáních (Imunohistochemie nebo imunocytochemie) MAb proti K8 na mammární žláze MAb proti K14 na mammární žláze All new hybridomas tested for recognition of target antigen in trophoblast DO-1 (p53) MDM2 p53 not detected with DO-1, no induction of MDM2 DO-1 (p53) negative MDM2 negative Intensive staining of p53 with induction of MDM2 DO-1 (p53) strong staining MDM2 - strong staining Immunohistochemistry testing of antibodies in tissue microarrays The antibody can be tested on different tissues at the same conditions Barvení buněk protilátkami Fixace buněk roztokem metanolu/acetonu je jednou z možných metod permeabilizace jejich membrány Přidání protilátek zaměřených proti specifickému antigenu Přidání značené sekundární protilátky UV illumination - immunofluorescence Immunocytochemistry H1299 (-ve control) H1299 + MDM2 Využití monoklonálních protilátek • MAb jsou fantastickým nástrojem pro buněčnou a molekulární biologii – Imunofluorescenční mikroskopie, imunoblotting, afinitní purifikace - inhibice ligandů/receptorů Microinjection of mAb to K8/K18 collapses filaments Využití monoklonálních protilátek • Mab jsou jsou fantastickým nástrojem pro buněčnou a molekulární biologii – Immunofluorescence microscopy, immunoblotting, affinity purification – Inhibition of ligands/receptors • Diagnostická patologie – histochemie K16 in healing skin K19 in cancer cells Využití monoklonálních protilátek • Mab jsou jsou fantastickým nástrojem pro buněčnou a molekulární biologii – Immunofluorescence microscopy, immunoblotting, affinity purification – Inhibition of ligands/receptors • Diagnostická patologie – Histochemie • Cílená terapie Monoklonální protilátky jako terapie the “Magic Bullet”? Humanizace myších monoklonálních protilátek myší IgG Chimerické Ig: již lidský těžký řetězec Humanizované Ig: zůstala pouze myší variablní oblast Lidské IgG Monoklonální protilátky schválené pro terapii Orthoclone OKT3 (mouse) Reopro (chimaeric) Rituxan (chimaeric) Zenapax (humanized) Simulect (chimaeric) Synagis (humanized) Remicaide (chimaeric) Herceptin (humanized) Mylotarg (humanized/toxin) Campath (humanized) Zevalin (chimaeric/radionuclide) Transplant rejection (1986) Cardiovascular disease (1994) Non-Hodgkin’s lymphoma (1997) Transplant rejection (1997) Transplant rejection (1998) Respiratory syncytial virus (1998) Rheumatoid arthritis/Crohn’s disease Metastatic breast cancer (1998) Acute myelogenous leukemia (2000) Chronic lymphocytic leukemia (2001) Non-Hodgkin’s lymphoma (2002) 10 nejdůležitějších kroků při přípravě monoklonálních protilátek 1. Think 2. Design screen 3. Raise antibodies in mouse 4. Fuse cells 5. Grow hybrids 6. Screen hybrids 7. Clone viable cells 8. Screen clones 9. Characterise antibodies 10. Publish • 60 secs • 1-5 days • 8 weeks • 2 hours • 1-2 weeks • 1 day • 2-4 weeks • 1 day • 1 year • 1-5 years Average total: 2 years 3 months What is a good antigen for antibody generation? Can we use the cells or total protein lysates? We could use anything for antibody generation. The critical point is to have a very good screening method when we are using the cells, cell lysates, tagged proteins or peptides. If we are using the cell lysates or cells the antibodies we are generating are against the major proteins in the lysate so sometimes it is better to use fractionated lysates. Only very good screening can give you good antibodies. The best for immunisation is purified protein without any tag sequence. Using peptides needs careful thinking before immunization!!! N-terminal peptide (we need free N-terminus) EAESGSSTSQC C-terminal peptide (we need free C-terminus) SHGPMLVAELE Peptide from middle of protein DSDSSGADTF(C) Free NH2 group and we need free C-terminus CQIYGKPIYQG Free NH2 groups and we need free N-terminus SLLTKQSEKAC What to do if the mice show no response to the peptide or protein? Can we combine different peptides to immunize them? How soon shall we terminate and kill the animal if their serum is negative in the assay. In my lab we combine different peptides if we are developing monoclonal antibodies. For polyclonal antibody development we combine only peptides from the same protein. It is not usual that the animal will not respond to the peptide if the peptide is well designed and coupled to carrier. Response to the protein could be weak or none. If we have animals with negative sera after third injection of antigen (2 months after first injection of antigen) we terminate the animal and start a new immunization with a new set of mice and newly purified antigen or new set of peptides. New protein Protein purification Immunization FusionScreening of AbCharacterization of Ab