21.09.201710-11.30hod A2-2.11 Doc. Paleček Úvod – historie, význam 28.09.2017 volno 05.10.201710-11.30hod A2-2.11 Doc. Paleček Základní charakteristiky kvasinek 12.10.201710-11.30hod A2-2.11 Doc. Paleček Diagnostické a molekulárně biologické metody 19.10.201710-11.30hod A2-2.11 Doc. Paleček Genetika kvasinkových organismů 26.10.201710-11.30hod A2-2.11 Doc. Paleček Morfologie a buněčný cyklus, párovací proces, 02.11.201710-11.30hod A2-2.11 prof. Svoboda Protoplasty kvasinek jako modelový objekt 09.11.201710-11.30hod A2-2.11 prof. Svoboda Struktura kvasinkové buňky, sekreční dráhy a endocytóza 16.11.201710-11.30hod A2-2.11 prof. Svoboda Patogenní kvasinky, morfologická charakteristika, medicínské aspekty 23.11.201710-11.30hod A2-2.11 Doc. Paleček Regulace transkripce, 1-2-3 hybridní systémy, reporter systémy 30.11.201710-11.30hod A2-2.11 Doc. Paleček Organizace kvasinkového chromatinu a evoluce 07.12.20179-12hod A2-2.11 Doc. Paleček test + předtermín zkoušky 14.12.20178-12hod A7-2.17 Svoboda+Paleček Cvičení k přednáškám Osnova 4. přednášky • Genetické metody – Plasmidy – Integrace do genomu – Teplotně-sensitivní mutanty – Tetrádová analýza – Syntetická letalita, suprese Výhody kvasinkového modelu • Rychle se množící EUKARYOTNÍ mikroorganismy (90 min/dělení, 25-30°C) • Vytváří kolonie na plotnách - mikrobiologické metody (otiskování ploten, kapkovací test =>toxiny v plotnách – HU, MMS …) • Stabilní haploidní i diploidní formy • Haploidní buňky lze křížit na diploidní (heterozygotní mutanty) • Diploidní buňky lze sporulovat a využít pro genetickou analýzu (tetrádová analýza) • Lze transformovat DNA (plasmidy i linearní) • Centromerické a multicopy plasmidy • Vysoká frekvence homologní rekombinace (lineární DNA) • Lze připravovat deleční, inzerční a mutantní kmeny • Vydrží v >15% glycerolu na -70°C „indefinitely“ • Techniky barvení (např. aktinový cytoskelet = phaloidin, buněčná stěna = calcofluor ... + GFP in vivo) • Techniky synchronizace buněk • S.c. má kompaktní genom – knihovny s genomovou DNA (ne cDNA) • Kompletně osekvenovaný genom (genomové aplikace) • EuroFan projekt – delece všech S.c. genů (+GFP, +2-hybrid) • Mikročipy - expresní profily za různých podmínek • Řada životních dějů má analogii v procesech v savčích buňkách (lidské geny testovány v kvasinkách - nemoci, metabolismus, regulační mechanismy) Nevýhoda – malé buňky, malé organely (např. nejsou vidět chromosomy – SMC) Chromosom III (nejmenší) CEN, ARS, TEL, Ty1-5 obsahuje MAT lokus Nomenklatura pro S.c.: YCRXXw: Y=yeast C= 3. chromosom R= pravé raménko XX=pořadové číslo w/c=Watson/Crick LEU2 – gen Leu2p - protein leu2∆ – delece leu2-1 – mutace (identifikační číslo alely) LEU2::HIS3 – inzerce HIS3 genu v lokusu LEU2 Nomenklatura pro S.p.: SPAXXXX: SP=S. pombe A= 1. chromosom … Forsburg: NRG, 2001 Baudat a Nicolas, PNAS, 1997 Laboratorní kvasinkové kmeny S. pombe – „501“ Genotype: h- ura4-∆18 leu1-32 ade6-704 S. Cerevisiae – „S288C“ – 1. osekvenovaný kmen Genotype: MATα SUC2 gal2 mal mel flo1 flo8-1 hap1 Notes: Strain used in the systematic sequencing project, the sequence stored in SGD. S288C does not form pseudohyphae. In addition, since it has a mutated copy of HAP1, it is not a good strain for mitochondrial studies. S288C strains are gal2- and they do not use galactose anaerobically. References: Mortimer and Johnston (1986) Genetics 113:35-43. Sources: ATCC:204508 „W303“ – nejčastěji používaný laboratorní kmen Genotype: MATa/MATα leu2-3,112 trp1-1 can1-100 ura3-1 ade2-1 his3-11,15 Notes: W303 also contains a bud4 mutation that causes haploids to bud with a mixture of axial and bipolar budding patterns. In addition, the original W303 strain contains the rad5-535 allele. References: W303 constructed by Rodney Rothstein Sources: Biosystems:YSC1058 Dvojhybridní systém: auxotrofie – využívána pro selekci Allele Reverts? Notes Molecular descriptiona Reference ade2-101 yes ochre mutation, red colonies G to T transversion at nucleotide 190, changing amino acid 64 from a Glu to a STOP Gai and Voytas, 2005 his3-200 no Cold sensitive; high frequency of petite formation, especially during transformation. 1 kb deletion, (-205 to 835) Struhl 1985; Fasullo and Davis 1988 leu2-3,112 no double mutant GTT-to-GCT missense change at codon 69, G insertion at nucleotide 249, G insertion at nucleotide 792, GAC-to-AAC missense change at codon 300. Hinnen et al. 1978; Gaber and Culbertson 1982; trp1-1 yes amber mutation GAG-to-TAG amber (STOP) nonsense change at codon 83 McDonald, et al. 1997 ura3-52 no - Ty1 insertion Rose and Winston 1984 Selekce Forsburg: NRG, 2001 - geneticin (G418) – podobný kanamycinu (mistranslace) - nourseothricin (NAT) – inhibitor ribosomalní proteosyntézy = miskodování (Streptomyces noursei), rezistence pomocí nat1 genu (N-acetyltransferasa – monoacetyluje NAT) - hygromycin B – inhibuje translokaci v průběhu translace (aminoglykosid z Streptomyces hygroscopicus), rezistence kódována hph genem z Klebsiella pneumoniae - phleomycin – interkaluje se do DNA a způsobuje DSB (zlomy, glycopeptid z Streptomyces verticulus), rezistence kódována ble genem z S. hindustanus Shuttle vektory • vychází z 2µm plasmidů nebo centromer (S.c.; 2µm přítomné také v Zygosaccharomyces bailii, Z. rouxii a Kluyveromyces drosophilarum) • Kvasinková část – marker (URA3, NAT …), CEN-ARS (1 kopie) nebo 2µm (~50 kopii na haploidní buňku) začátek replikace • Bakteriální část – Kan resistence, replikace • Promotor, tag, MCS – Kondicionální mutanty (fenotyp-funkce) – Nadprodukce (suprese mutací nebo toxicita) MET1 CUP1 MFA1 Methionin repressed Indukovány mědí MATa specifický (haploid specifický) Gadaleta et al., 2013, BioTechniques YAC (yeast artificial chromosome) • Bakteriální část – Amp resistence, počátek replikace • Kvasinková část – marker, CENARS, TEL • 50-500kbp insert např. lidská genová banka pro HuGO 80000 klonů YAC (270kbp) • Klonování, množení, uchování dlouhých fragmentů DNA • Výzkum savčích telomer a centromer • Pomocí transfekce, lipofekce nebo elektroporace lze dostat YAC i do savčích buněk – náhodně se integrují do genomu - výzkum nesestřihnutých genů (dlouhé regulační úseky) Transformační protokol • Exponenciální kultura • Opláchnout vodou a TE/LiAc roztokem • Rozsuspendovat v TE/LiAc roztoku a přidat DNA (plasmidová/cirkulární i lineární DNA) • Přidat TE/LiAc/PEG4000 roztok • 30 minut na 30°C a poté teplotní šok při 42°C (15min) • Stočit a pelet rozsuspendovat v TE roztoku • Rozetřít na selektivní plotnu Yeast surface display aglutinin Kuroda et al, Appl Microbiol Biotechnol (2002) - využití i pro biotechnologie – vychytávání těžkých kovů (dekontaminace) - 6xHis-Aga2 (vychytání Cu) integrován v genomu - CUP1-GTS1 (indukce aglutinace) na plasmidu Integrativní plasmidy - integrativní plasmid pro P. pastoris (GS1115, genotype: his4 ) - exprese z AOX1 promotoru v P.pastoris - nemají CEN ani 2µm části Integrace I. - integrativní plasmid pro P. pastoris (GS1115, genotype: his4 ) - exprese z AOX1 promotoru - integrace do AOX1 lokusu - mechanismus homologní rekombinace Integrace II. - integrace do his4 lokusu mechanismus homologní rekombinace • Využití inhibitoru FOA pro „odléčení“ URA3 markeru (FOA je přeměňována Ura3p dekarboxylázou na toxický 5-fluorouracil => URA3+ buňky nerostou, zatímco ura3- buňky jsou rezistentní) • Buňky se stávají ura-, takže URA3 marker lze využít několikrát Integrace: disrupce/delece genu - Studium funkce genu – fenotyp (1. delece, 2. mutace) - nezbytný/esenciální gen => buňky potřebují gen např. na plasmidu (plasmid shuffling) - životaschopné – mutace lze přímo integrovat do genomu - mutantní kmeny se testují na citlivost k různým „toxinům“ – dále je lze křížit s funkčně podobnými geny-mutantami a hledat jejich funkční vztahy (synthetic lethal x epistatic x suprese) 1. krok 2. krok neesenciální gen specifická mutace Delece genu - PCR • pro rekombinaci stačí pouze krátká homologie (50-100nt pro S.c.) • místo integrativních plasmidů = oligonukleotidy ~ 70nt dlouhé postačí (při 2 krokové PCR se kromě dlouhé homologie vnesou ještě specifické sekvence pro pozdější manipulace …) kanMX kanMX kanMX 1.PCR (barcode) 2.PCR (homologie) Kvasinkový ORF - systematicky provedeno na >6000 genech v rámci projektu EuroFan - kmeny lze získat z archivu EUROSCARF http://web.uni-frankfurt.de/fb15/mikro/euroscarf/index.html Giaever et al, Nature, 2002 Deleční knihovna – S. pombe - S. pombe potřebuje delší homologii (serial PCR = 40-80bp; block PCR = 80-350bp) - deleční knihovna od Bioneer (Korea, 25 000$) Kim et al, Nat Biotech (2010) MX4/6 kazety - nourseothricin (NAT) – inhibitor ribosomalní proteosyntézy = miskodování (Streptomyces noursei), rezistence pomocí nat1 genu (N-acetyltransferasa – monoacetyluje NAT) - hygromycin B – inhibuje translokaci v průběhu translace (aminoglykosid z Streptomyces hygroscopicus), rezistence kódována hph genem z Klebsiella pneumoniae - phleomycin – interkaluje se do DNA a způsobuje DSB (zlomy, glycopeptid z Streptomyces verticulus), rezistence kódována ble genem z S. hindustanus) Společná struktura kazety – možnost záměny kazet (pro genetické studie – křížení) Hentges et al.: Yeast, 2005 Goldstein et al.: Yeast, 1999 EuroFan projekt - testy fenotypu Buněčná stěna (stabilizující) Oprava DNA Mikrotubuly (stabilizující) ts cs - Systematicky provedeno na >6000 genech v rámci projektu EuroFan - Funkční kategorie genů – anotace v databázích (genová ontologie) Mikrotubuly (destabilizující) Bun. stěna (destabilizující) Winzeler et al, Science, 1999; Giaever et al, Nature, 2002 ~ 6000 heterozygotních delečních kmenů ~ 5000 homozygotních delečních kmenů (+ ~ 1000 esenciálních genů) (neesenciální – růst za specifických podmínek nebo redundantní procesy) - Testováno ~400 malých molekul a stresových podmínek (-aa ...) - Celkem provedeno ~ 6milionů testů - multidrug resistance (MDR) pokud byl gen potřebný pro resistenci vůči >20% z testovaných látek - Podobné profily svědčí o funkční podobnosti Hillenmeyer et al, Science, 2008 Geny/Proteiny peroxisomu Mulleder et al, Cell, 2016 - deleční knihovna testována na AMK metabolismus (změna koncentrace AMK) Mulleder et al, Cell, 2016 - transport proteinů a váčků (Golgi/ER … degradace proteinů a recyklace AMK) má zřejmý vztah k hladině AMK – překvapivě velký vliv má struktura chromatinu vztah genom-metabolom Delece genu pomocí transposonů Defekt buněčné stěny MacDonald et al.: Nature, 1999 esenciální Citlivé … Micheletal,eLife,2017 SAturated Transposon Analysis in Yeast (SATAY) - generováno 1000000 klonů – 300000 inzercí (vysoké pokrytí na 6000 genů) - cirkulární DNA použita pro NGS sekvenování (MiniDs transposon-specifické primery) - inzerce každých 40bp (preferenčně v nucleosom-free oblastech) - každý transposon sekvenován 20x … Michel et al, eLife, 2017 - inzerce chyběly v esenciálních genech (zelené šipky) - charakterizace GO, drug screening, syntetická letalita, … - rozlišení na úrovni domén (GAL10 – dvě domény z nichž esenciální je pouze první …) - C-koncové, ale i Nkoncové delece K integraci u kvasinek není nutný CRISPR - účinná homologní rekombinace - CRISPR zvyšuje účinnost mnohonásobné integrace (řízené štěpení DNA)Horwitz et al, Cell Syst, 2015 Cas9 zaintegrován gRNA kazeta definuje místo štěpení donorová DNA nese integrační insert Integrace: inzerce genu (CRISPR-Cas9) Horwitz et al, Cell Syst, 2015 Phosphoenol pyruvate (glykolýza) 6 integrací do 3 lokusů (po dvou) syntéza kyseliny mukonové - bioplasty AroY v pěti kopiích – zvýšilo výtěžek delece ARO1 blokuje tvorbu aromatických AMK (dráha vede na kys. mukonovou) a nutí buňky do této dráhy – v biotechnologickém procesu nejdříve na bohatém médiu roste biomasa – poté se na minimálním médiu (bez aromatických AMK) spouští tato dráha gRNA kazeta definuje místo štěpení donorová DNA nese integrační insert nová metabolická dráha lokusy: GAL80, HO, ARO1 (vyřazení ARO1) AroB, D, F, Y a Z = E. coli CATA = C. albicans Cre rekombinasa Postup lze použít několikrát se stále stejným markerem Nevýhoda pro genetické studie (marker nekosegreguje s mutací)Guldener et al, NAR (1996) Watsonetal,Gene,2008 diploid Příprava monomerů pro výrobu plastů – využití Candida tropicalis Lu et al., JACS (2010) • Candida tropicalis je schopna využít mastné kyseliny jako zdroj uhlíku (acetyl-CoA) • mutantní kmen (∆POX4, ∆POX5) není schopen β-oxidace a přeměňuje je oxidací na di-karboxylové kyseliny (Picataggio et al, Biotechnology, 1992) • pomocí flp rekombinasy odstranili geny oxidás (4 alkohol oxidásy) a dehydrogenás (6 alkohol dehydrogenás), aby eliminovali ω-oxidaci • nový kmen je schopen produkovat ω-hydroxymastné kyseliny, které lze použít pro výrobu bio-polymerů (plastů podobných polyetylenům, bio-odbouratelné na bio-palivo) • další modifikace kmene (integrace genů pro lipásy) by umožnilo přímé odbourávání odpadních olejů … Dvojité mutanty – funkční příbuznost haploid x haploid => diploid – stejný fenotyp - identický gen - bez fenotypu – díky wt alele (různé geny) sporulace => haploid – stejný fenotyp – epistatický (funkčně příbuzné geny) - aditivní až letální (paralelní dráha, redundance, rozpad komplexu) A b C D e F A B E A b c D E F Mutageneze pomocí hydroxylaminu … hledání (screening) letálního mutanta – mutageneze kmene s vypínatelným plasmidem (promotor nebo FOA – viz plasmid shuffling) Epistatický Letální D C F Proteinový komplex Pomocí těchto genetických metod byly analyzovány metabolické dráhy … proteinové komplexy … Supresory Supresory potlačují původní fenotyp – mutace téhož genu „napraví“ původní mutaci (nedojde k produkci toxického produktu) - mutace sousedního (protein) zesílí oslabenou interakci - nadprodukce proteinu z paralelní dráhy - nadprodukce proteinu z téže dráhy A b C D E A b C D E F F A E D C FF B E Proteinový komplex