CG020 Genomika Přednáška 4 Genetika přímá Jan Hejátko Funkční genomika a proteomika rostlin, Středoevropský technologický institut (CEITEC) a Národní centrum pro výzkum biomolekul, Přírodovědecká fakulta, Masarykova univerzita, Brno hejatko@sci.muni.cz, www.ceitec.eu 2  Přímá vs. reverzní genetika  Využití knihoven inzerčních mutantů v postupech přímé genetiky  vyhledávání v knihovnách inzerčních mutantů podle  anatomicky nebo morfologicky detekovatelného fenotypu  metabolického profilu  exprese zajímavých genů  identifikace mutovaného lokusu  plasmid rescue  iPCR  Využití knihoven bodových mutantů v přímé genetice  poziční klonování  GWAS Osnova 3  Přímá vs. reverzní genetika Osnova 4 „Přímě genetický“přístup 1. IDENTIFIKACE FENOTYPU 2. GENETICKÉ MAPOVÁNÍ 3. GENOVÁ IDENTIFIKACE -poziční klonování „Reverzně genetický“ přístup 1.IZOLACE SEKVENČNĚ SPECIFICKÉHO MUTANTA 2. IDENTIFIKACE FENOTYPU 3. PRŮKAZ KAUZÁLNÍ SOUVISLOSTI MEZI INZERCÍ A FENOTYPEM NÁHODNÁ MUTAGENEZE Přístupy „klasické“genetiky versus „reverzně genetický“ přístup ve funkční genomice EMS T-DNA (retro)transposons 5  Přímá vs. reverzní genetika  Využití knihoven inzerčních mutantů v postupech přímé genetiky  vyhledávání v knihovnách inzerčních mutantů podle  anatomicky nebo morfologicky detekovatelného fenotypu Osnova 6 Inzerční mutageneze v přímé genetice  Infekce EμMyc myší retrovirem MoMuLV vede k tvorbě lymfomů, které vznikly díky aktivaci Pim kináz (ve 40% aktivaci Pim1 a v 15% aktivaci Pim2), molekulární cíle těchto kináz byly neznámé  Využití inzerční mutageneze ve studiu kancerogeneze Mikkers et al., Nature Gen (2002) ? 7  Infekce EμMyc pim1 mutantů retrovirem MoMuLV vede k tvorbě lymfomů, které obsahují v 90% inzerci v blízkosti (aktivaci) Pim2  Využití inzerční mutageneze ve studiu kancerogeneze Mikkers et al., Nature Gen (2002) ? Inzerční mutageneze v přímé genetice 8  Infekce EμMyc dvojnásobných mutantů pim1, pim2 retrovirem MoMuLV vede k tvorbě lymfomů, u kterých lze očekávat aktivaci buď některého ze signálních partnerů Pim proteinů (Y), některého z proteinů Pim signální dráhy (X) nebo k aktivaci některé z příbuzných drah vedoucích k lymfomagenezi (Z)  Využití inzerční mutageneze ve studiu kancerogeneze Mikkers et al., Nature Gen (2002) ? Inzerční mutageneze v přímé genetice 9  Štěpení genomové DNA a ligace speciálních linkerů, tzv. splinkerett (zvýšení specifity amplifikace)  Izolace genomových oblastí přílehajících k místu inzerce proviru Mikkers et al., Nature Gen (2002) Devon et al., Nucl Acid Res (1994) Inzerční mutageneze v přímé genetice 10  První amplifikace pomocí specifických primerů  Izolace genomových oblastí přílhajících k místu inzerce proviru Mikkers et al., Nature Gen (2002) Devon et al., Nucl Acid Res (1994) Inzerční mutageneze v přímé genetice 11  Druhá amplifikace pomocí „nested“ primerů (zvýšení specificity)  Izolace genomových oblastí přílhajících k místu inzerce proviru Mikkers et al., Nature Gen (2002) Devon et al., Nucl Acid Res (1994) Inzerční mutageneze v přímé genetice 12  Sekvenace a lokalizace oblastí přiléhajících k protoviru vyhledáváním v anotovaných databázích myšího genomu  Izolace genomových oblastí přílhajících k místu inzerce proviru Mikkers et al., Nature Gen (2002) Devon et al., Nucl Acid Res (1994) Inzerční mutageneze v přímé genetice 13  Přímá vs. reverzní genetika  Využití knihoven inzerčních mutantů v postupech přímé genetiky  vyhledávání v knihovnách inzerčních mutantů podle  anatomicky nebo morfologicky detekovatelného fenotypu  metabolického profilu Osnova 14  hromadná a automatizovaná analýza metabolitů (až 25.000) pomocí GC-MS technik v knihovnách T-DNA mutantů  Metabolické profilování rostlin Metabolické profilování 15  hromadná a automatizovaná analýza metabolitů (až 25.000) pomocí GC-MS technik v knihovnách T-DNA mutantů  identifikace (např. i komerčně) zajímavých mutantů  Metabolické profilování rostlin Metabolické profilování 16  hromadná a automatizovaná analýza metabolitů (až 25.000) pomocí GC-MS technik v knihovnách T-DNA mutantů  identifikace (např. i komerčně) zajímavých mutantů  snadná a rychlá izolace genů pomocí identifikace T-DNA zasažených sekvencí  Metabolické profilování rostlin Metabolické profilování 17  možnost využít i speciální techniky, např. mikrodisekce  Metabolické profilování rostlin Metabolické profilování 18  Přímá vs. reverzní genetika  Využití knihoven inzerčních mutantů v postupech přímé genetiky  vyhledávání v knihovnách inzerčních mutantů podle  anatomicky nebo morfologicky detekovatelného fenotypu  metabolického profilu  exprese zajímavých genů Osnova 19  analýza expresního profilu (vzorce) daného genu a identifikace mutantů se změnou exprese  Identifikace mutantů se změnou expresního profilu Expresní profil 20  analýza expresního profilu (vzorce) daného genu a identifikace mutantů se změnou exprese  Identifikace mutantů se změnou expresního profilu  možnost částečné automatizace (virtuální digitální mikroskopie) Expresní profil 21 Vyhledávání pomocí automatické mikroskopie Dobisova and Hejatko, Methods in Mol Biol, 2014 image.vsi 22 WT Expresní profil 23  Přímá vs. reverzní genetika  Využití knihoven inzerčních mutantů v postupech přímé genetiky  vyhledávání v knihovnách inzerčních mutantů podle  anatomicky nebo morfologicky detekovatelného fenotypu  metabolického profilu  exprese zajímavých genů  identifikace mutovaného lokusu  plasmid rescue  iPCR Osnova 24  Identifikace chromozomální přestavby zodpovědné za keříčkovitý fenotyp u Arabidopsis  popis fenotypu Identifikace mutovaného lokusu 25 Identifikace mutanta  zvlněné listy  chybějící trychomy na listech a na stonku  opožděné stárnutí  keříčkovitý fenotyp (poruchy větvení) 26  samčí sterilita, poruchy v prodlužování tyčinek (A,B) (porovnej se standardním typem C) Identifikace mutanta 27  Identifikace chromozomální přestavby zodpovědné za keříčkovitý fenotyp u Arabidopsis  popis fenotypu  identifikace T-DNA mutované oblasti Identifikace mutovaného lokusu 28 1. Identifikace oblasti genomové DNA přiléhající k levé hranici pomocí plasmid rescue  restrikční štěpení (EcoRI) mutantní genomové DNA  religace a transformace E.coli  izolace plazmidové DNA z pozitivně selektovaných klonů  identifikovaná sekvence byla identická s genem pro NAD7 kódovaným na mtDNA Identifikace mutovaného lokusu 29 2. Identifikace oblasti genomové DNA přiléhající k pravé hranici pomocí inverzní PCR (iPCR)  restrikční štěpení (EcoRI) mutantní genomové DNA  purifikace, religace a PCR pomocí T-DNA specifických primerů  klonování a sekvencování  identifikovaná sekvence nebyla homologní k žádné sekvencí se známou funkcí Identifikace mutovaného lokusu 30  Identifikace chromozomální přestavby zodpovědné za keříčkovitý fenotyp u Arabidopsis  popis fenotypu  identifikace T-DNA mutované oblasti  lokalizace T-DNA inzerce v genomu Arabidopsis Identifikace mutovaného lokusu 31 Vyhledávání v knihovně IGF-BAC  genomová knihovna obsahující 10,752 klonů s průměrnou velikostí inzertu 100 kb  bakteriální klony uspořádané v mikrotitračních deskách  knihovna nanesena na nylonové filtry pro hybridizaci s radioaktivně značenou sondou 32 I. Sekvence přiléhající k levé hranici T-DNA  celkem 28 pozitivně hybridizujících klonů  19 z nich lokalizováno na chromozomu 2  18 s podobností k mtDNA II. Sekvence přiléhající k pravé hranici T-DNA  celkem 6 pozitivně hybridizujích klonů  všechny lokalizovány na chromozomu 2 Mapování pomocí IGF-BAC databáze 33 levé hranici T-DNASekvence přiléhající k pravé a Lokalizace genomové T-DNA přiléhající k levé i pravé hranici T-DNA na chromozomu 2  pravděpodobně došlo k inverzi téměř celého chromozómu 2 34  Přímá vs. reverzní genetika  Využití knihoven inzerčních mutantů v postupech přímé genetiky  vyhledávání v knihovnách inzerčních mutantů podle  anatomicky nebo morfologicky detekovatelného fenotypu  metabolického profilu  exprese zajímavých genů  identifikace mutovaného lokusu  plasmid rescue  iPCR  Využití knihoven bodových mutantů v přímé genetice  poziční klonování Osnova 35  Poziční klonování  podstatou je kosegregační analýza segregující populace (většinou potomstva informativního zpětného křížení) s molekulárními markery  RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphism)  RAPD (Randomly Amplified Polymorphic DNA)  SSLP (Simple Sequence Length Polymorphism)  polymorfizmus délky genomu (PCR produktů) amplifikovaného pomocí specifických primerů  polymorfizmus délky restrikčních fragmentů úseků genomu, detekce pomocí Southern blotu (PCR po naštěpení genomové DNA a ligaci adaptorů)  polymorfizmus délky náhodně (pomocí krátkých primerů, 8-10 bp) amplifikovaných úseků genomu  CAPS (Cleaved Amplified Polymorphic Sequence)  polymorfizmus délky restrikčních fragmentů úseků genomu amplifikovaných pomocí PCR Identifikace mutovaného lokusu 36 m m M M Col Col + M Col Ler m M + M + M Ler Ler M M m m Col Ler M M m m Ler Ler m + M M Col Ler m M + M Ler Ler + + M M Col Col Col Ler + M + M M M m + Col Ler + + M M ♂ Ler Ler ♀ Col Col mm M M Příprava mapovací populace M m+ M Poziční klonování 37 Rekombinantní analýza – určení procenta rekombinace mezi mutací a molekulárním markerem r [%] = počet chomozomů Col / počet všech chromozomů x 100 marker I – ve vazbě 5 mutantů 1/10x100 = 10% marker II - žádná vazba 6 mutantů 7/12x100 = 58% • Analýza cca 2000 mutantních linií • Určení nejbližšího (ještě) segregujícího markeru • Identifikace mutace pomocí sekvenování Ler Col Ler Col 38 Mapa DNA molekulárních markerů 39 Markery pro jemné mapování 40  Přímá vs. reverzní genetika  Využití knihoven inzerčních mutantů v postupech přímé genetiky  vyhledávání v knihovnách inzerčních mutantů podle  anatomicky nebo morfologicky detekovatelného fenotypu  metabolického profilu  exprese zajímavých genů  identifikace mutovaného lokusu  plasmid rescue  iPCR  Využití knihoven bodových mutantů v přímé genetice  poziční klonování  GWAS Osnova 41 Genome Wide Association Study - GWAS 42  Přímá genetika umožňuje cíleně vyhledávat zajímavé fenotypy, jejichž asociace s určitým genem/lokusem není dosud známa  Lze využít jak inzerční mutageny, tak mutace bodové  Inzerční mutace  (většinou) mutace se ztrátou funkce (loss-of- function)  iPCR  plasmid rescue  Bodové mutace  Jak mutace se ztrátou funkce (loss-of-function), tak i  Mutace se získanou funkcí (gain-of-function)  poziční klonování  GWAS Klíčové koncepty 43 Diskuse