Ctirad Hofr LifeB – Laboratoř interakce a funkce esenciálních Biomolekul Fluorescenční metody ve vědách o životě – cesta od molekuly k buňce C7230 FGP – Funkční genomika a proteomika NCBR – Národní centrum výzkumu biomolekul Přírodovědecká fakulta | Masarykova univerzita Fluorescenční rezonanční přenos energie – FRET Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR2 Přenos energie Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR3 Přehled přednášky 1. Původ rezonančního přenosu energie 2. Charakteristické veličiny FRET 3. Aplikace FRET při studiu biomolekul Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR4 1. Přenos excitační energie • Přenos elektronové energie se uskutečňuje mechanismy zářivými nebo nezářivými. • K zářivému (triviálnímu) přenosu energie dochází, když excitovaná molekula donoru emituje záření, které je následně reabsorbováno molekulou akceptoru. Dochází k výměně fotonu. • K excitaci nezářivým přenosem energie (fluorescenční rezonanční přenos energie, FRET) dochází, když ve směsi molekul dochází k absorpci pouze molekulami donoru, avšak konečným výsledkem jsou excitované molekuly akceptoru, které budící záření neabsorbují. Při tomto přenosu energie nedochází k emisi světla donorem. Nedochází k výměně fotonu! Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR5 K čemu lze použít rezonanční přenos energie? • Konformační změny • Vazba ligandu a receptoru • Štěpení proteinu/DNA • Fúze membrán Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR6 Rezonanční přenos energie • Analogie s přenosem energie mezi ladičkami. • V případě molekul dochází k přenosu energie díky dipól-dipólovým interakcím. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR7 Dipólové momenty přechodu • Dipólový moment přechodu je kvantově mechanická záležitost. Není skutečným dipólovým momentem. Je dán okamžitým stavem elektronového obalu molekuly. Velikost dipólového momentu přechodu udává schopnost daného stavu molekuly absorbovat nebo emitovat světlo. Směr dipólového momentu přechodu udává směr, ve kterém je světlo molekulou nejlépe absorbováno nebo emitováno. • Molekuly přednostně absorbují záření, jehož elektrická složka kmitá ve stejné rovině jako je absorpční dipólový moment přechodu elektronu do vyšší energetické hladiny. • Molekuly přednostně emitují záření ve stejné rovině jako je emisní dipólový moment přechodu elektronu do nižší energetické hladiny. Absorpce Emise Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR8 Interakce dipólových momentů přechodu Donoru a Akceptoru Donor Akceptor Absorpce donoru Emise donoru Absorpce akceptoru Emise akceptoru Abs l(nm) Fluorescence Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR9 FRET - nezářivý přenos energie • V přítomnosti vhodného akceptoru může donor přenést energii excitovaného stavu přímo na akceptor bez vyzáření fotonu. • Takto excitovaný akceptor až teprve pak vyzáří energii, kterou původně absorboval donor. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR10 Fluorescenční rezonanční přenos energie (FRET) • Rezonanční přenos energie lze charakterizovat rychlostní konstantou (kDA), která vyjadřuje pravděpodobnost přenosu. • Určující složkou je dipól-dipólový přenos energie, pro nějž byl odvozen Försterův vzorec (v případě slabé vazby, kdy vzájemné interakce donoru a akceptoru neovlivní optická spektra) v této formě: tD – doba dohasínání fluorescence donoru, R0 – vzdálenost ve které je pravděpodobnost přenosu energie poloviční tj. rovna pravděpodobnosti vnitřní deaktivace vzbuzeného stavu molekuly, r – vzdálenost mezi donorem a akceptorem. • Rezonanční přenos energie je silně závislý na vzdálenosti donoru a akceptoru. 6 01         = r R k D DA t Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR11 Interakce dipól-indukovaný dipól • Polární molekula s dipólovým momentem m1 může indukovat dipólový moment v polarizovatelné molekule. • Indukovaný dipól interaguje s permanentním dipólem první molekuly a dochází k vzájemnému přitahování. • Indukovaný dipól (modré šipky) následuje změny v orientaci permanentního dipólu (žluté šipky). 6 0 2 2 1 r V  m −= Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR12 Účinnost přenosu E • Je dána poměrným množstvím fotonů, které jsou absorbovány donorem a následně vyzářeny akceptorem. • Měří se určením relativní intenzity fluorescence donoru za nepřítomnosti (FD) a za přítomnosti akceptoru (FDA). • Rychle klesá se 6 mocninou vzdálenosti! D DA F F E −=1 )( )( 1 rk rk E DAD DA + = − t 66 0 6 0 rR R E + = Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR13 Popis hybridizace molekul DNA za použití FRET 0 0.5 1 1.5 500 550 600 650 Emise l [nm] normal.intenzita fluorescence • Při hybridizaci DNA se dostávají Donor a Akceptor do těsné blízkosti. • Změna spektra ukazuje na FRET a je důkazem hybridizace DNA. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR14 R0 Försterova vzdálenost • R0 je vzdálenost donoru a akceptoru, při které je účinnost přenosu E 50%. • Velikost R0 je obvykle 2 – 6 nm, což je srovnatelné s velikostí biologických molekul. • Závislost účinnosti přenosu E na vzdálenosti r je nejvýraznější (nejrychleji se mění) v případě, že vzdálenost donoru a akceptoru je blízká R0. • R0 udává, do jaké střední vzdálenosti může daný pár donor-akceptor komunikovat – je to charakteristika páru fluoroforů. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR15 Závislost účinnosti přenosu na r r = 0.1 x R0 r = 0.5 x R0 r = 2.0 x R0 r = 4.0 x R0 66 0 6 0 rR R E + = Rozsah vhodný pro měření: 0.5 - 2 R0. • E = 0.999999 • E = 0.984615 • E = 0.015384 • E = 0.000244 Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR16 Na čem závisí R0? • Na orientaci dipólových momentů přechodu pro emisi donoru a absorbci akceptoru (pro faktor k2 se používá průměrná hodnota 2/3). • Na optických vlastnostech prostředí (index lomu vody nH20= 1.33). • Na kvantovém výtěžku donoru QD. • Na míře překryvu J (l) emisního spektra donoru a absorpčního spektra akceptoru. ( ) o6/142 0 A)(v)(211.0 lk JQnR D − = Abs l(nm) Fluorescence Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR17 Závislost orientačního faktoru k2 na orientaci dipólových momentů přechodu • Pro náhodné uspořádání dipólových momentů přechodu se běžně používá hodnota k2 = 2/3. • V případě, že jsou dipólové momenty přechodu kolmé k2= 0. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR18 Závislost R0 na spektrálním překryvu • Přenos je větší při větším překryvu spekter a tím je také delší R0. • Závislost je velmi pozvolná, není lineární, ale závisí na šesté odmocnině plochy překryvu. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR19 Měření vzdálenosti pomocí FRET • Melitin je nejdůležitější součást včelího jedu (poškozuje buněčné struktury, rozkládá bílé a červené krvinky, způsobuje odumírání buňky) při léčbě se využívá jeho protizánětlivých účinků. • Melitin je složen z 26 AK Tryptofan v poloze 19 byl donorem, Dansyl na N konci byl akceptorem. • Po samostatné spektrální charakterizaci melitinu s Trp jako donoru a Dansyl jako akceptoru byla určena hodnota R0 = 2.36 nm. • Z míry zhášení je možno určit vzdálenost Trp a Dansylu. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR20 Určení vzdálenosti Trp od N konce melitinu za použití FRET • Na základě úbytku intenzity fluorescence za přítomnosti akceptoru je možno určit účinnost přenosu a odtud vzdálenost donoru (Trp) od akceptoru (na N konci). • r = 2.44 nm. D DA F F E −=1 66 0 6 0 rR R E + = Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR21 Výhody FRET • Účinnost přenosu energie nezávisí na prostředí mezi donorem a akceptorem. • Měření poměru intenzit umožňuje použití FRET analýz nezávisle na koncentraci. • Pro většinu aplikací není nutno znát R0. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR22 FRET umožňuje rozlišit mezi více variantami uspořádání flexibilních proteinů • apoA-I protein reguluje metabolismus cholesterolu. • apo A-I se váže do lipidové membrány. • byla navržena dvě možná uspořádání proteinů v membráně. • kvůli flexibilitě lipidů není možno použít strukturní metody. • jeden z řetězců apoA-I proteinů byl naznačen fluoresceinem (Donor) a druhý tetrametylrodaminem (Akceptor). • Nejdříve bylo změřeno emisní spektrum samotného donoru na jednom řetězci ApoA-I. • Po přidání druhého řetězce s akceptorem byl sledován úbytek intenzity fluorescence donoru. • Docházelo k výraznému rezonančnímu přenosu energie. • To dokázalo relativně malou vzdálenost mezi donorem a akceptorem. • Bylo potvrzeno pásové uspořádáni ApoA-I. • http://pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/la402727a Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR23 Sledování denaturačních změn Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR24 FRET mezi CFP a YFP https://www.thermofisher.com/order/fluorescence-spectraviewer/#!/ Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR25 Zhášení FRET fotovybělováním https://www.thermofisher.com/order/fluorescence-spectraviewer/#!/ Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR27 Skládání proteinů in vivo • ApoE4 je spojen s Alzheimerovou nemocí a váže se na nervové buňky. • ApoE3 má podobnou sekvenci AK, ale na nervové buňky se neváže. • Bylo navrženo, že vazebná schopnost k nervovým buňkám souvisí s různým uspořádáním domén ApoE proteinů. • Pro ověření byly v nervových buňkách transfekovány ApoE konstrukty. • FRET analýza ukázala, že ApoE4 v konformaci se spojenými doménami se váže na nervové buňky, zatímco ApoE3 nemá své domény ve vzájemné blízkosti a na nervové buňky se neváže. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR28 FRET senzory • Detekce estrogenu Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR29 Sledování fosforilace proteinů • Sledování zpracování inzulínu Fluorescence • Receptorem inzulínu je tyrozinkináza, která fosforyluje tyrozin v rozpoznávané sekvenci, která je následně vázána SH2 doménou dalšího proteinu. • Tato vazba způsobuje přiblížení CFP a YFP a indukuje FRET. • Proteinový konstrukt byl exprimován v buňkách. • Po vystavení buněk 100 nM inzulínu došlo k postupnému zvýšení přenosu energie. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR30 Sledování morfologických změn buněk • V zelené oblasti FRET se zpracovává nejvíce GTP a v tomto směru se také buňka pohybuje. Změna v intenzitě fluorescence (vpravo) se neprojevuje ve FRET obrazu (vlevo) Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR31 Kombinace FRET a časově rozlišené mikroskopie • FRET-FLIM „mikroskopie“ byla použita k charakterizaci tvorby intranukleárních dimerů transkripčního faktoru C/EBPα v živých buňkách hypofýzy GHFT1-5. H. Wallrabe and A. Periasamy, Imaging protein molecules using FRET and FLIM microscopy, Current Opinion in Biotechnology, Volume 16, Issue 1, Analytical biotechnology, 2005, Pages 19-27. D DA E t t −= 1 Kratší čas dohasínání donoru při FRET. Normální – delší čas dohasínání při fotovybělení akceptoru FRET. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR32 Štěpení ribozymem • Po vazbě ribozymu na substrát dochází k přiblížení části A a B, což se projeví zvýšením FRET. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR33 Detekce přítomnosti c-fos mRNA • c-fos mRNA je transkripčním faktorem, který ovlivňuje buněčný cyklus a diferenciaci. • FRET sondy byly použity pro zjištění přítomnosti c-fos mRNA v buněčné kultuře. • Byla prokázána přítomnost c-fos mRNA u aktivovaných buněk (vlevo). Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR34 Membránová fůze • Jednotlivé membrány obsahují donor nebo akceptor. • V případě splynutí membrán pozorujeme FRET. Využití FRETu pro vizualizaci fúze lipidových dvojvrstev s vezikuly: Intermediáty zachycené pomocí vysokorychlostní mikrofluorescenční spektroskopie. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR35 Aplikace FRETu v mikroskopii Lei, G and MacDonald, R.C., Biophys J. 2003 Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR36 Praktické poznámky při měření FRET •FD, •FDA, •účinnost E, •Angström. Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR37 Literatura • Lakowicz J.R.: Principles of Fluorescence Spectroscopy. Third Edition, Springer + Business Media, New York, 2006. • Fišar Z.: FLUORESCENČNÍ SPEKTROSKOPIE V NEUROVĚDÁCH http://www1.lf1.cuni.cz/~zfisar/fluorescence/Default.htm • Grafika z knihy Principles o Fluorescence pro účely této přednášky laskavě poskytnul Prof. J. R. Lakowitz • Animace FRET v plném rozlišení laskavě poskytnul Dr. Joseph T. E. Roland Poděkování Fluorescenční metody | C7230 | Ctirad Hofr – LifeB | FGP | NCBR38 Vlastní fluorescence proteinů