Využití porózního hydrogelu jako 3D scaffoldu pro růst leukemických B lymfocytů

STUDENÁ, Radana, D. HORÁK, Jiří BALOUN, Z. PLICHTA and Šárka POSPÍŠILOVÁ. Využití porózního hydrogelu jako 3D scaffoldu pro růst leukemických B lymfocytů (Use of Porous Hydrogel as a 3D Scaffold for the Growth of Leukemic B Lymphocytes). In XLI. brněnské onkologické dny. 2017. ISSN 0862-495X.

Basic information

• Original name: Využití porózního hydrogelu jako 3D scaffoldu pro růst leukemických B lymfocytů
• Name in Czech: Využití porózního hydrogelu jako 3D scaffoldu pro růst leukemických B lymfocytů
• Name (in English): Use of Porous Hydrogel as a 3D Scaffold for the Growth of Leukemic B Lymphocytes
• Authors: STUDENÁ, Radana (203 Czech Republic, belonging to the institution), D. HORÁK (203 Czech Republic), Jiří BALOUN (203 Czech Republic, belonging to the institution), Z. PLICHTA (203 Czech Republic) and Šárka POSPÍŠILOVÁ (203 Czech Republic, guarantor, belonging to the institution).
• Edition: XLI. brněnské onkologické dny, 2017.

Other information

• Original language: Czech
• Type of outcome: Conference abstract
• Field of Study: 30204 Oncology
• Country of publisher: Czech Republic
• Confidentiality degree: is not subject to a state or trade secret
• RIV identification code: RIV/00216224:14110/17:00097894
• Organization unit: Faculty of Medicine
• ISSN: 0862-495X
• Keywords in English: hematooncology; leukemia; hydrogel; stromal cells
• Tags: EL OK
• Tags: International impact, Reviewed

Abstract

Východiska: Primární lidské B buňky chronické lymfocytární leukemie (CLL) podléhají při kultivaci in vitro buněčné smrti, nicméně jejich přežití lze signifikantně prodloužit kontaktem se stromálními buňkami nebo přítomností specifických solubilních faktorů. Pro účely výzkumu chování CLL buněk jsme vytvořili 3D in vitro model, ve kterém bylo simulováno vhodné mikroprostředí pro CLL buňky umožňující studium mechanizmu jejich přežívání v dlouhodobé kultivaci. Materiál a metody: Naším cílem bylo, aby struktura scaffoldu byla geometricky podobná 3D morfologii kostní dřeně, která vyplňuje trabekulární kost, aby měl 3D scaffold dostatečně velký povrch pro zachycení buněk a zároveň velkou pórovitost pro buněčnou migraci a transport živin. Dalším požadavkem byla také alespoň částečná transparentnost potřebná pro pozorování buněčného modelu pomocí optických metod. Připravili jsme 3D scaffoldy z porózního hydrogelu poly (2-hydroxyetyl metakrylát) (pHEMA), poly (2-hydroxyetyl metakrylát-co-2-aminoetyl metakrylát) p (HEMA-co-AEMA) a p (HEMA-co-AEMA) modifikovaný s často používaným adhezním peptidem Arg-Gly-Asp (RGD). Všechny hydrogelové scaffoldy byly vyrobeny ve čtyřech velikostech pórů (125, 200, 300 a 350–450 um). Scaffoldy byly testovány pomocí HS-5 buněčné linie odvozené z lidských stromálních buněk kostní dřeně a HEK293 buněčné linie odvozené z lidských embryonálních buněk ledvin. Výsledky: Hydrogelový scaffold p (HEMA-co-AEMA) modifikovaný adhezním peptidem Arg-Gly-Asp (RGD) s velikostí pórů 350–450 um prokázal, že je vhodným systémem pro 3D kultivace buněk, neboť podporuje interakce mezi buňkami navzájem a také mezi buňkami a materiálem. Tento scaffold byl použit pro nasazení kultivace složené z HS-5 buněk a CLL buněk, které byly stimulovány pomocí ligandu CD40 a cytokinu IL-4. Viabilita CLL buněk byla vyšší v přítomnosti obou stimulátorů zároveň než v případě každého zvlášť. Závěr: Ukázali jsme, že technologie 3D scaffoldů je velmi dobře využitelná pro modelování mikrosystémů, kde se nádorové buňky chovají jako ve svém přirozeném mikroprostředí.

Abstract (in English)

Background: Primary human B cells chronic lymphocytic leukemia undergoes apoptosis, from which they can be rescued by contact with stromal cells or by the addition of specific soluble factor, when cultured in vitro. For research purposes of the behavior of CLL cells we created 3D in vitro model in which we simulated appropriate microenvironment for CLL cells to allow study the mechanism of survival of these cells in long-term cultivation. Material and Methods: Our aim was the scaffold structure to be geometrically similar to the 3D morphology of supporting bone marrow tissue in a trabecular bone; the 3D scaffold was also designed to conform to biocompatibility, sufficiently large surface area for cell attachment, high porosity for cell migration, proliferation and transport of nutrients. Another requirement was a partial transparency for inspection of cell model with optical techniques. We prepared 3D scaffolds from porous hydrogel poly (2-hydroxyethyl methacrylate) (pHEMA), poly (2-hydroxyethyl methacrylate-co-2-aminoethyl methacrylate) p (HEMA-co-AEMA) and p (HEMA-co-AEMA) modified with frequently used cell adhesion peptide Arg-Gly-Asp (RGD). All hydrogel scaffolds were manufactured in four pore diameters (125, 200, 300 and 350–450 um). Scaffolds were tested with human bone marrow stromal cell line HS-5 and human embryonic kidney cell line HEK293. Results: Hydrogel scaffold p (HEMA-co-AEMA) modified with adhesion peptide Arg-Gly-Asp (RGD) with pore diameter of 350–450 um demonstrated that it is a convenient system for 3D cell cultivation, since it promotes interaction between the cells and also between the cells and the material. This scaffold was used for seeding of co-cultivation system of HS-5 cells with CLL-cells, which were stimulated through the CD40L signaling pathway as well as via the IL-4 pathway. Viability of B-CLL cells was higher in the presence of both stimulators than with each alone. Conclusions: We have shown that 3D scaffold technology is very useful for modeling of microsystems where the cancer cells behave like in their natural microenvironment.

Links

• LD15144, research and development project: Name: Buněčné a nebuněčné základy pro regeneraci kostí a zubů (Acronym: TissueENG)

Investor: Ministry of Education, Youth and Sports of the CR