2014
Enzyme-linked electrochemical DNA ligation assay using magnetic beads
STEJSKALOVÁ, Eva, Petra HORÁKOVÁ, Jan VACEK, Richard BOWATER, Miroslav FOJTA et. al.Základní údaje
Originální název
Enzyme-linked electrochemical DNA ligation assay using magnetic beads
Autoři
STEJSKALOVÁ, Eva (203 Česká republika), Petra HORÁKOVÁ (203 Česká republika), Jan VACEK (203 Česká republika), Richard BOWATER (826 Velká Británie a Severní Irsko) a Miroslav FOJTA (203 Česká republika, garant, domácí)
Vydání
Analytical and Bioanalytical Chemistry, Heidelberg, Springer, 2014, 1618-2642
Další údaje
Jazyk
angličtina
Typ výsledku
Článek v odborném periodiku
Obor
10406 Analytical chemistry
Stát vydavatele
Německo
Utajení
není předmětem státního či obchodního tajemství
Odkazy
Impakt faktor
Impact factor: 3.436
Kód RIV
RIV/00216224:14740/14:00075856
Organizační jednotka
Středoevropský technologický institut
UT WoS
000337787400010
Klíčová slova anglicky
Electrochemistry; Enzyme labeling; DNA ligase; Nicked DNA; Magnetic beads; Immobilized assays
Štítky
Příznaky
Mezinárodní význam, Recenzováno
Změněno: 11. 3. 2015 08:32, Martina Prášilová
Anotace
V originále
DNA ligases are essential enzymes in all cells and have been proposed as targets for novel antibiotics. Efficient DNA ligase activity assays are thus required for applications in biomedical research. Here we present an enzyme-linked electrochemical assay based on two terminally tagged probes forming a nicked junction upon hybridization with a template DNA. Nicked DNA bearing a 5 biotin tag is immobilized on the surface of streptavidin-coated magnetic beads, and ligated product is detected via a 3 digoxigenin tag recognized by monoclonal antibody-alkaline phosphatase conjugate. Enzymatic conversion of napht-1-yl phosphate to napht-1-ol enables sensitive detection of the voltammetric signal on a pyrolytic graphite electrode. The technique was tested under optimal conditions and various situations limiting or precluding the ligation reaction (such as DNA substrates lacking 5-phosphate or containing a base mismatch at the nick junction, or application of incompatible cofactor), and utilized for the analysis of the nick-joining activity of a range of recombinant Escherichia coli DNA ligase constructs. The novel technique provides a fast, versatile, specific, and sensitive electrochemical assay of DNA ligase activity.