J 2014

Enzyme-linked electrochemical DNA ligation assay using magnetic beads

STEJSKALOVÁ, Eva, Petra HORÁKOVÁ, Jan VACEK, Richard BOWATER, Miroslav FOJTA et. al.

Základní údaje

Originální název

Enzyme-linked electrochemical DNA ligation assay using magnetic beads

Autoři

STEJSKALOVÁ, Eva (203 Česká republika), Petra HORÁKOVÁ (203 Česká republika), Jan VACEK (203 Česká republika), Richard BOWATER (826 Velká Británie a Severní Irsko) a Miroslav FOJTA (203 Česká republika, garant, domácí)

Vydání

Analytical and Bioanalytical Chemistry, Heidelberg, Springer, 2014, 1618-2642

Další údaje

Jazyk

angličtina

Typ výsledku

Článek v odborném periodiku

Obor

10406 Analytical chemistry

Stát vydavatele

Německo

Utajení

není předmětem státního či obchodního tajemství

Odkazy

Impakt faktor

Impact factor: 3.436

Kód RIV

RIV/00216224:14740/14:00075856

Organizační jednotka

Středoevropský technologický institut

UT WoS

000337787400010

Klíčová slova anglicky

Electrochemistry; Enzyme labeling; DNA ligase; Nicked DNA; Magnetic beads; Immobilized assays

Štítky

Příznaky

Mezinárodní význam, Recenzováno
Změněno: 11. 3. 2015 08:32, Martina Prášilová

Anotace

V originále

DNA ligases are essential enzymes in all cells and have been proposed as targets for novel antibiotics. Efficient DNA ligase activity assays are thus required for applications in biomedical research. Here we present an enzyme-linked electrochemical assay based on two terminally tagged probes forming a nicked junction upon hybridization with a template DNA. Nicked DNA bearing a 5 biotin tag is immobilized on the surface of streptavidin-coated magnetic beads, and ligated product is detected via a 3 digoxigenin tag recognized by monoclonal antibody-alkaline phosphatase conjugate. Enzymatic conversion of napht-1-yl phosphate to napht-1-ol enables sensitive detection of the voltammetric signal on a pyrolytic graphite electrode. The technique was tested under optimal conditions and various situations limiting or precluding the ligation reaction (such as DNA substrates lacking 5-phosphate or containing a base mismatch at the nick junction, or application of incompatible cofactor), and utilized for the analysis of the nick-joining activity of a range of recombinant Escherichia coli DNA ligase constructs. The novel technique provides a fast, versatile, specific, and sensitive electrochemical assay of DNA ligase activity.