2014
A simplified method for peptide de novo sequencing using O-18 labeling
VORÁČ, Aleš, Ondrej ŠEDO, Jan HAVLIŠ a Zbyněk ZDRÁHALZákladní údaje
Originální název
A simplified method for peptide de novo sequencing using O-18 labeling
Autoři
VORÁČ, Aleš (203 Česká republika, domácí), Ondrej ŠEDO (203 Česká republika, domácí), Jan HAVLIŠ (203 Česká republika, domácí) a Zbyněk ZDRÁHAL (203 Česká republika, garant, domácí)
Vydání
European Journal of Mass Spectrometry, CHICHESTER (ENGLAND), IM PUBLICATIONS, 2014, 1469-0667
Další údaje
Jazyk
angličtina
Typ výsledku
Článek v odborném periodiku
Obor
10406 Analytical chemistry
Stát vydavatele
Velká Británie a Severní Irsko
Utajení
není předmětem státního či obchodního tajemství
Odkazy
Impakt faktor
Impact factor: 1.000
Kód RIV
RIV/00216224:14740/14:00073785
Organizační jednotka
Středoevropský technologický institut
UT WoS
000337268400006
Klíčová slova anglicky
peptide de novo sequencing; mass spectrometry; isotopic labeling; O-18 incorporation
Štítky
Příznaky
Mezinárodní význam, Recenzováno
Změněno: 11. 3. 2015 11:30, Martina Prášilová
Anotace
V originále
Incorporation of an O-18 atom into a peptide C-terminus by proteolytic cleavage in the presence of (H2O)-O-18 is one of the most effective ways of enhancing tandem mass spectrometry (MS/MS)-based de novo sequencing. Incorporation is usually accomplished by procedures including vacuum-assisted drying of tryptic peptides extracted from gels, their subsequent reconstitution in a (H2O)-O-16/(H2O)-O-18 mixture and re-treatment with trypsin. In the present work, we propose a simplified procedure for O-18 incorporation into tryptic peptides by adding (H2O)-O-18 and trypsin to the original digest solution. In comparison to published methods, the proposed protocol for peptide de novo sequencing brings significant advantages in analysis and workflow with no deterioration in method performance. We show that labeling by this simplified method leads to a highlighting of the y-ion fragment series in the peptide matrix-assisted laser desorption/ionization (MALDI)-MS/MS data, which facilitates MS/MS data interpretation. We also prove that eliminating acid extraction of peptides from gels does not result in a decrease in sequence coverage or a qualitative loss of particular peptides detectable by MALDI-MS. The method was examined by MALDI-MS/MS on bovine serum albumin and recombinant histidine kinase CKI1 from Arabidopsis thaliana, and was verified by de novo sequencing of tryptic peptides originating from Apodemus sylvaticus salivary proteins.
Návaznosti
ED1.1.00/02.0068, projekt VaV |
| |
GBP206/12/G151, projekt VaV |
|