C 2022

Single organoid droplet-based staining method for high-end 3D imaging of mammary organoids

SUMBAL, Jakub a Zuzana SUMBALOVÁ KOLEDOVÁ

Základní údaje

Originální název

Single organoid droplet-based staining method for high-end 3D imaging of mammary organoids

Autoři

SUMBAL, Jakub (203 Česká republika, domácí) a Zuzana SUMBALOVÁ KOLEDOVÁ (703 Slovensko, garant, domácí)

Vydání

New York, Mammary Stem Cells, od s. 259-269, 11 s. Methods in Molecular Biology, vol 2471, 2022

Nakladatel

Springer New York - Humana Press

Další údaje

Jazyk

angličtina

Typ výsledku

Kapitola resp. kapitoly v odborné knize

Obor

10601 Cell biology

Stát vydavatele

Spojené státy

Utajení

není předmětem státního či obchodního tajemství

Forma vydání

tištěná verze "print"

Odkazy

Kód RIV

RIV/00216224:14110/22:00128719

Organizační jednotka

Lékařská fakulta

ISBN

978-1-0716-2192-9

EID Scopus

2-s2.0-85124779948

Klíčová slova anglicky

3D culture; Clearing; Confocal imaging; Microenvironment; Organoid; Staining.

Štítky

Příznaky

Mezinárodní význam, Recenzováno
Změněno: 13. 5. 2025 13:24, Mgr. Tereza Miškechová

Anotace

V originále

In the last decade, organoids became a tremendously popular technique in developmental and cancer biology for their high pathophysiological relevance to in vivo models with the advantage of easier manipulation, real-time observation, potential for high-throughput studies, and reduced ethical issues. Among other fundamental biological questions, mammary organoids have helped to reveal mechanisms of mammary epithelial morphogenesis, mammary stem cell potential, regulation of lineage specification, mechanisms of breast cancer invasion or resistance to therapy, and their regulation by stromal microenvironment. To exploit the potential of organoid technology to the fullest, together with optimal organoid culture protocols, visualization of organoid architecture and composition in high resolution in three dimensions (3D) is required. Whole-mount imaging of immunolabeled organoids enables preservation of the 3D cellular context, but conventional confocal microscopy of organoid cultures struggles with the large organoid sample size and relatively long distance from the objective to the organoid due to the 3D extracellular matrix (ECM) that surrounds the organoid. We have overcome these issues by physical separation of single organoids with their immediate stroma from the bulk ECM. Here we provide a detail protocol for the procedure, which entails single organoid collection and droplet-based staining and clearing to allow visualization of organoids in the greatest detail.

Návaznosti

MUNI/A/1382/2019, interní kód MU
Název: Zdroje pro tkáňové inženýrství 10 (Akronym: TissueEng 10)
Investor: Masarykova univerzita, Zdroje pro tkáňové inženýrství 10, DO R. 2020_Kategorie A - Specifický výzkum - Studentské výzkumné projekty
MUNI/G/1446/2018, interní kód MU
Název: Deciphering the mechanisms of mammary epithelial branched pattern formation through iterative biological and mathematical modelling
Investor: Masarykova univerzita, Deciphering the mechanisms of mammary epithelial branched pattern formation through iterative biological and mathematical modelling, INTERDISCIPLINARY - Mezioborové výzkumné projekty
ROZV/28/LF19/2020, interní kód MU
Název: Regulace morfogeneze epitelu mléčné žlázy pomocí mechanických sil a dynamiky signalizace
Investor: Ministerstvo školství, mládeže a tělovýchovy ČR, Regulace morfogeneze epitelu mléčné žlázy pomocí mechanických sil a dynamiky signalizace, Interní rozvojové projekty
90129, velká výzkumná infrastruktura
Název: Czech-BioImaging II